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1、第一部分:MiR-548k基因座拷贝数扩增促进食管鳞癌恶性增殖及淋巴结转移的机制研究 2、第二部分:PCLO在食管鳞癌发生发展中的作用及其分子机制研究 3、第三部分:p53介导DNA损伤应答相关的microRNAs的筛选研究

第一部分 miR-548k基因座拷贝数扩增促进食管鳞癌恶性增殖及淋巴结转移的机制研究第10-85页
    缩略词语表第11-14页
    中文摘要第14-16页
    Abstract第16-18页
    前言第18-21页
    材料与方法第21-55页
        1. 实验材料第21-33页
            1.1 菌种、质粒和细胞株第21-22页
            1.2 实验动物第22-23页
            1.3 主要试剂第23-25页
            1.4 引物的合成与设计第25-27页
            1.5 Hsa-miR-548k mimic和inhibitor第27页
            1.6 主要仪器设备第27-28页
            1.7 生物学软件第28页
            1.8 常用试剂的配制第28-33页
        2. 实验方法第33-55页
            2.1 对细胞的处理第33-34页
            2.2 MiR-548k慢病毒载体构建和包装(本部分由吉凯基因完成)第34-35页
            2.3 稳定高表达miR-548k细胞系的筛选第35-37页
            2.4 细胞增殖实验第37页
            2.5 细胞克隆形成实验第37页
            2.6 细胞周期检测第37页
            2.7 细胞侵袭转移实验(xCELLigence Real-Time Cell Analyzer)第37页
            2.8 细胞侵袭迁移实验(Transwell assay)第37-39页
            2.9 细胞总RNA和总蛋白的提取第39-40页
            2.10 蛋白和RNA浓度测定第40-41页
            2.11 逆转录(Reverse Transcription,RT)与PCR扩增第41页
            2.12 Western Blot第41-44页
            2.13 感受态细胞的制备第44-45页
            2.14 细菌的转化第45页
            2.15 质粒提取及鉴定第45-47页
            2.16 免疫共沉淀(Immunoprecipitation,IP)试验第47页
            2.17 免疫荧光(Immunofluoresence,IF)第47-48页
            2.18 裸鼠移植瘤实验第48页
            2.19 裸鼠肺转移模型第48-49页
            2.20 裸鼠上肢膝后窝淋巴结转移模型(Popliteal lymph node metastasis model)第49页
            2.21 裸鼠食管原位成瘤模型第49-50页
            2.22 条件培养基的浓缩与分析第50页
            2.23 内皮细胞成管试验第50-51页
            2.24 内皮细胞迁移实验第51页
            2.25 免疫组织化学第51-52页
            2.26 microRNA原位杂交(in situ hybridization histochemistry;ISH)第52-54页
            2.27 靶基因3’UTR与miRNA结合实验(双荧光素酶报告系统实验)第54页
            2.28 统计分析第54-55页
    实验结果第55-75页
        1. MIR-548K定位于高频率拷贝数扩增区域11Q13.3-11Q13.4第55-56页
        2. MIR-548K在食管鳞癌中存在过表达并且与生存预后和淋巴结转移相关第56-58页
        3. MIR-548K增强食管鳞癌细胞的增殖和克隆形成能力第58-61页
        4. MIR-548K加快食管鳞癌细胞的G_2/M期转换第61-62页
        5. MIR-548K促进食管鳞癌细胞发生侵袭转移第62-63页
        6. MIR-548K促进食管鳞癌细胞裸鼠皮下成瘤和食管原位成瘤第63-64页
        7. MIR-548K增强食管鳞癌细胞移植瘤的浸润能力和血行肺转移能力第64-65页
        8. MIR-548K通过下调细胞周期G_2期检测点激酶WEE1而加快G_2/M期进展,促进细胞增殖第65-68页
        9. MIR-548K通过抑制转录因子KLF10的表达而增强EGFR通路活性,促进细胞增殖和侵袭转移第68-70页
        10. MIR-548K能够趋化淋巴内皮细胞,促进淋巴管形成第70-72页
        11. MIR-548K抑制ADAMTS1的表达而促进淋巴管形成第72-75页
    讨论第75-79页
        1. MIR-548K可作为食管鳞癌生存预后和淋巴结转移的分子标志物第75-76页
        2. MIR-548K通过靶基因WEE1参与细胞周期调控第76-77页
        3. MIR-548K靶向KLF10而上调EGFR的表达,并增强其下游通路的活性第77页
        4. MIR-548K下调ADAMTS1的表达而促进食管鳞癌细胞发生淋巴结转移第77-78页
        5. 展望:MIR-548K有望成为临床诊治的新靶标第78-79页
    结论第79-80页
    参考文献第80-85页
第二部分 PCLO在食管鳞癌发生发展中的作用及其分子机制研究第85-159页
    缩略词语表第86-88页
    中文摘要第88-90页
    Abstract第90-92页
    前言第92-95页
    材料与方法第95-128页
        1. 实验材料第95-106页
            1.0 菌种、质粒和细胞株第95-96页
            1.1 实验动物第96页
            1.2 主要试剂第96-97页
            1.3 主要试剂盒第97-98页
            1.4 其他试剂第98-99页
            1.5 引物的合成与设计第99-100页
            1.6 小干扰RNA(siRNA)的合成第100页
            1.7 主要仪器设备第100-101页
            1.8 生物学软件第101页
            1.9 常用试剂的配制第101-106页
        2. 实验方法第106-128页
            2.1 对细胞的处理第106页
            2.2 EGF处理细胞第106页
            2.3 细胞瞬时转染第106-107页
            2.4 RNAi慢病毒载体构建和包装(本部分由上海吉凯基因化学技术有限公司完成)第107-109页
            2.5 稳定敲降PCLO细胞系的筛选第109-110页
            2.6 细胞增殖实验第110页
            2.7 细胞克隆形成实验第110页
            2.8 细胞周期检测第110页
            2.9 细胞侵袭转移实验(xCELLigence Real-Time Cell Analyzer)第110-111页
            2.10 细胞侵袭转移实验(Transwell assay)第111-112页
            2.11 总蛋白的提取和细胞总RNA第112-113页
            2.12 胞核-胞浆-胞膜蛋白制备第113-115页
            2.13 蛋白和RNA浓度测定第115-116页
            2.14 逆转录(Reverse Transcription,RT)与PCR扩增第116-117页
            2.15 Western Blot第117-119页
            2.16 感受态细胞的制备第119-120页
            2.17 细菌的转化第120页
            2.18 质粒提取及鉴定第120-122页
            2.19 免疫共沉淀(Immunoprecipitation,IP)试验第122页
            2.20 免疫荧光(Immunofluoresence,IF)第122-123页
            2.21 裸鼠移植瘤实验第123页
            2.22 裸鼠肺转移模型第123-124页
            2.23 免疫组织化学第124-125页
            2.24 Piccolo小鼠单克隆抗体制备第125页
            2.25 单抗效价检测第125-126页
            2.26 单克隆抗体内毒素含量测定第126-127页
            2.27 单克隆抗体亚型测定第127页
            2.28 统计分析第127-128页
    实验结果第128-151页
        1. PCLO基因在食管鳞癌(ESCC)中存在高频率突变和较高的拷贝数扩增第128-130页
        2. PCLO基因在其它癌症中存在高频率突变和较多的拷贝数扩增第130-131页
        3. PCLO在ESCC和其它多种肿瘤中都存在MRNA水平上调情况第131-132页
        4. PICCOLO的过表达与ESCC的生存预后差率显著相关第132-135页
        5. PICCOLO是一个潜在的早期(T1期)ESCC的分子标志物第135-136页
        6. 生物学功能研究表明PICCOLO影响ESCC的恶性进展第136-141页
            6.1 敲降PCLO减弱ESCC细胞的增殖和克隆形成能力第136-138页
            6.2 敲降PCLO导致ESCC细胞发生G2/M期阻滞第138-139页
            6.3 敲降PCLO抑制ESCC细胞的侵袭和转移能力第139-140页
            6.4 体内实验证明敲降PCLO抑制ESCC细胞的裸鼠成瘤和肺转移能力第140-141页
        7. PICCOLO是EGFR信号通路的重要调控因子第141-147页
            7.1 敲降PCLO促进EGFR内化第141-142页
            7.2 敲降PCLO促进EGFR转位到晚期内吞小体/溶酶体(late endosome/Iysosome)第142页
            7.3 敲降PCLO抑制EGFR转位到再循环小体(recycle endosome)第142-143页
            7.4 Piccolo影响EGFR的泛素化和蛋白稳定性第143-145页
            7.5 Piccolo负调控E3泛素连接酶Siah1而稳定EGFR的蛋白水平第145-146页
            7.6 Piccolo影响EGFR下游通路的活性第146-147页
        8. 异源表达EGFR能够部分恢复由于PICCOLO下调而导致的ESCC表型改变第147-148页
        9. 利用单克隆抗体靶向PICCOLO作为食管鳞癌潜在的治疗策略第148-151页
            9.1 Piccolo具有膜定位第148-149页
            9.2 Piccolo mAb具有一定的抑制细胞增殖效果第149-151页
    讨论第151-154页
        1. 在基因组层面上发现PCLO存在高频率突变和拷贝数扩增第151页
        2. 在临床应用层面上发现PICCOLO可以作为ESCC预后的分子标志物第151-152页
        3. 在生物学功能层面上发现PICCOLO能够调控ESCC的恶性表型第152页
        4. 在分子机制层面上发现PICCOLO通过调控EGFR的蛋白泛素化水平而影响其在内吞小体中的分选、蛋白稳定性及其下游通路第152-153页
        5. 在靶向治疗层面上发现PICCOLO MAB对ESCC细胞有一定的抑制增殖效果第153-154页
    结论第154-156页
    参考文献第156-159页
第三部分:p53介导DNA损伤应答相关的microRNAs的筛选研究第159-201页
    缩略语表第160-162页
    中文摘要第162-164页
    Abstract第164-166页
    前言第166-172页
    材料和方法第172-182页
        1. 实验材料第172-175页
            1.1 实验试剂第172-173页
            1.2 主要仪器第173-174页
            1.3 实验试剂的配制第174-175页
        2. 实验方法第175-182页
            2.1 细胞传代第175页
            2.2 细胞冻存第175-176页
            2.3 UV处理细胞第176页
            2.4 细胞总RNA的提取第176页
            2.5 细胞总蛋白的提取第176-177页
            2.6 蛋白的浓度测定第177页
            2.7 RNA的浓度测定第177页
            2.8 Western Blotting第177-178页
            2.9 RT-PCR第178-180页
            2.10 生物信息学软件分析差异表达miRNAs第180-181页
            2.11 miRNA mimic转染第181页
            2.12 细胞增殖实验第181页
            2.13 细胞克隆形成实验第181页
            2.14 流式细胞分析第181页
            2.15 统计分析第181-182页
    实验结果第182-193页
        1. 紫外线UV-C诱导细胞DNA损伤应答和周期阻滞第182-184页
        2. UV-C照射导致MIRNAs发生差异表达第184-188页
        3. 定位于第13/17号染色体和X染色体的MLRNAs参与UV-C诱导的DNA损伤应答第188-189页
        4. UV-C诱导DNA损伤应答相关MIRNAs参与的通路分析第189-190页
        5. MIR-320A有利于细胞遭受UV-C照射之后的存活第190-193页
    讨论第193-196页
    结论第196-198页
    参考文献第198-201页
附录第201-213页
基金资助第213-214页
在读期间已发表及待发表的英文文章第214-215页
P53相关microRNAs的研究进展(文献综述)第215-233页
    参考文献第222-233页
致谢第233-235页

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