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重组人肝活素(HPS)的抗肝损伤活性研究

摘要第4-5页
ABSTRACT第5-6页
第一章 文献综述第10-25页
    1.1 急性肝衰竭第10-16页
    1.2 HPS结构特点及生物学功能第16-18页
        1.2.1 HPS的结构特点第16-17页
        1.2.2 HPS的生物学特性及功能第17-18页
    1.3 肝损伤模型的损伤机制及应用第18-23页
        1.3.1 化学性肝损伤模型第18-20页
        1.3.2 药物性肝损伤模型第20-22页
        1.3.3 免疫性肝损伤模型第22页
        1.3.4 肝切除模型第22页
        1.3.5 酒精性肝损伤模型第22-23页
        1.3.6 其他因素诱导的肝损伤模型第23页
    1.4 临床上检测肝功能的指标第23-24页
    1.5 本课题研究的意义第24-25页
第二章 材料与方法第25-36页
    2.1 主要仪器设备第25页
    2.2 实验材料第25-28页
        2.2.1 主要试剂第25-26页
        2.2.2 细胞株第26页
        2.2.3 实验动物第26页
        2.2.4 常用溶液配制第26-28页
    2.3 实验方法第28-36页
        2.3.1 常用细胞培养条件第28页
        2.3.2 实验动物肝损伤模型第28-30页
        2.3.3 肝损伤模型动物存活率观察第30页
        2.3.4 血清ALT、AST水平检测第30-31页
        2.3.5 HE染色及组织学观察第31页
        2.3.6 TUNEL检测细胞凋亡第31-32页
        2.3.7 PCNA抗体免疫组化检测肝细胞的再生能力第32页
        2.3.8 组织RNA的提取与反转录第32页
        2.3.9 Real-time PCR第32页
        2.3.10 Caspase 3 活性检测第32-33页
        2.3.11 CBA法检测细胞因子第33页
        2.3.12 酶联免疫吸附法 (ELISA)检测HPS在血清中的表达第33页
        2.3.13 组织蛋白的提取与定量第33-34页
        2.3.14 细胞总蛋白的提取第34页
        2.3.15 小鼠原代肝实质细胞的分离第34页
        2.3.16 MTS法检测细胞增殖第34页
        2.3.17 乳酸脱氢酶(LDH)的检测第34-35页
        2.3.18 统计学分析第35-36页
第三章 结果与讨论第36-74页
    3.1 HPS的体内抗肝损伤活性研究第36-61页
        3.1.1 HPS减轻CCl_4诱导的小鼠急性肝损伤第36-48页
        3.1.2 HPS减轻CCl_4诱导的大鼠急性肝损伤第48-50页
        3.1.3 HPS减轻D-gal N/LPS诱导的小鼠肝损伤第50-57页
        3.1.4 HPS减轻D-gal N诱导的大鼠肝损伤第57-59页
        3.1.5 HPS降低Con A诱导的免疫性肝损伤小鼠转氨酶水平第59-60页
        3.1.6 小结第60-61页
    3.2 HPS的体外活性研究第61-67页
        3.2.1 HPS促进小鼠原代肝细胞增殖第61-62页
        3.2.2 HPS减轻CCl_4诱导的肝细胞损伤第62-65页
        3.2.3 HPS促进Hep G2及小鼠原代肝细胞MAPK/ERK信号通路活化第65-66页
        3.2.4 小结第66-67页
    3.3 HPS是一种新的小鼠急性肝损伤标志物第67-74页
        3.3.1 肝切除模型中HPS的表达变化第67-68页
        3.3.2 不同剂量CCl_4处理对小鼠生存状态的影响第68-69页
        3.3.3 不同剂量CCl_4处理对小鼠肝功能的影响第69-70页
        3.3.4 不同剂量CCl_4处理对小鼠肝脏组织结构的影响第70-71页
        3.3.5 不同剂量CCl_4处理对小鼠HPS表达水平的影响第71-72页
        3.3.6 小结第72-74页
第四章 结论与展望第74-75页
    4.1 结论第74页
    4.2 展望第74-75页
参考文献第75-85页
发表论文和参加科研情况说明第85-86页
附录第86-89页
致谢第89-90页

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