摘要 | 第3-6页 |
ABSTRACT | 第6-9页 |
英文缩略词表 | 第13-15页 |
前言 | 第15-23页 |
1 糖尿病视网膜病变流行病学 | 第15页 |
2 糖尿病视网膜病变发病机制研究进展 | 第15-17页 |
3 中医学对糖尿病的认识及其对糖尿病视网膜病变的治疗 | 第17-18页 |
4 芪灯明目胶囊及其组分治疗糖尿病视网膜病变研究现状 | 第18-19页 |
5 代谢组学在中医药研究中的应用 | 第19-20页 |
6 转录组学在中医药研究中的应用 | 第20-21页 |
7 研究思路 | 第21-23页 |
第一部分 糖尿病视网膜病变模型的建立 | 第23-33页 |
1 实验材料 | 第23-24页 |
1.1 药物与试剂 | 第23页 |
1.2 实验动物 | 第23-24页 |
1.3 仪器 | 第24页 |
1.4 实验场地 | 第24页 |
2 实验方法 | 第24-26页 |
2.1 分组与造模 | 第24-25页 |
2.2 大鼠一般状态观察及体重测定 | 第25页 |
2.3 血糖测定 | 第25页 |
2.4 视网膜HE染色 | 第25-26页 |
2.5 视网膜消化铺片 | 第26页 |
2.6 视网膜透射电镜观察 | 第26页 |
2.7 统计方法 | 第26页 |
3 实验结果 | 第26-31页 |
3.1 大鼠一般状态观察 | 第26-27页 |
3.2 模型建立期间大鼠体重及血糖 | 第27-28页 |
3.3 视网膜HE染色病理检测结果 | 第28-29页 |
3.4 视网膜血管形态观察 | 第29页 |
3.5 视网膜透射电镜观察 | 第29-31页 |
4 结论 | 第31页 |
5 讨论 | 第31-33页 |
第二部分 芪灯明目胶囊及组分对糖尿病视网膜病变大鼠血管新生、氧化应激及炎症影响研究 | 第33-45页 |
1 实验材料 | 第33-34页 |
1.1 药物与试剂 | 第33-34页 |
1.2 实验动物 | 第34页 |
1.3 实验仪器 | 第34页 |
1.4 实验场地 | 第34页 |
2 实验方法 | 第34-36页 |
2.1 糖尿病视网膜病变模型的制备 | 第34-35页 |
2.2 分组及给药 | 第35页 |
2.3 大鼠一般状态观察 | 第35-36页 |
2.4 体重及血糖测定 | 第36页 |
2.5 样本采集与指标测定 | 第36页 |
2.6 统计方法 | 第36页 |
3 实验结果 | 第36-42页 |
3.1 芪灯明目胶囊及各组分对DR大鼠体重的影响 | 第37-38页 |
3.2 芪灯明目胶囊及各组分对DR大鼠血糖的影响 | 第38页 |
3.3 芪灯明目胶囊及各组分对DR大鼠血管异常新生的影响 | 第38-39页 |
3.4 芪灯明目胶囊及各组分对DR大鼠氧化应激的影响 | 第39-40页 |
3.5 芪灯明目胶囊及各组分对DR大鼠炎症因子的影响 | 第40-41页 |
3.6 芪灯明目胶囊及各组分抑制血管新生、抗氧化抗炎作用总体评价 | 第41-42页 |
4 结论 | 第42页 |
5 讨论 | 第42-45页 |
第三部分 基于转录组学的芪灯明目胶囊治疗糖尿病视网膜病变作用机制研究 | 第45-78页 |
1 实验材料 | 第45-47页 |
1.1 药物与试剂 | 第45-46页 |
1.2 实验动物 | 第46页 |
1.3 实验仪器 | 第46页 |
1.4 实验场地 | 第46-47页 |
2 实验方法 | 第47-51页 |
2.1 糖尿病视网膜病变模型的制备 | 第47页 |
2.2 分组及给药 | 第47页 |
2.3 大鼠视网膜样本采集 | 第47-48页 |
2.4 视网膜组织总RNA提取 | 第48页 |
2.5 总RNA定量与鉴定 | 第48-49页 |
2.6 文库构建 | 第49页 |
2.7 RNA-seq样本制备及测序 | 第49-50页 |
2.8 数据分析 | 第50-51页 |
3 实验结果 | 第51-74页 |
3.1 大鼠视网膜组织中总RNA定量与鉴定 | 第51-52页 |
3.2 序列比对和全基因组reads分布图谱 | 第52-57页 |
3.3 表达差异分析 | 第57-69页 |
3.4 差异基因的KEGG Pathway生物通路分析 | 第69-73页 |
3.5 差异基因的Gene Ontology(GO)基因功能分析 | 第73-74页 |
4 结论 | 第74-75页 |
5 讨论 | 第75-78页 |
第四部分 基于代谢组学的芪灯明目胶囊治疗糖尿病视网膜病变作用机制研究 | 第78-100页 |
1 实验材料 | 第78-79页 |
1.1 药物与试剂 | 第78-79页 |
1.2 实验动物 | 第79页 |
1.3 实验仪器 | 第79页 |
1.4 实验场地 | 第79页 |
2 实验方法 | 第79-84页 |
2.1 糖尿病视网膜病变模型的制备 | 第79-80页 |
2.2 分组及给药 | 第80页 |
2.3 血液样本采集 | 第80页 |
2.4 血浆样本预处理 | 第80-81页 |
2.5 UPLC-Q-Exactive Orbitrap-MS分析条件 | 第81-82页 |
2.6 数据分析处理 | 第82-84页 |
3 结果 | 第84-97页 |
3.1 UPLC-Q-Exactive Orbitrap-MS方法学验证 | 第84-85页 |
3.2 模式识别分析 | 第85-90页 |
3.3 潜在生物标记物的筛选及鉴定 | 第90-97页 |
4 结论 | 第97页 |
5 讨论 | 第97-100页 |
第五部分 研究总结 | 第100-102页 |
第六部分 论文创新点 | 第102-103页 |
参考文献 | 第103-117页 |
致谢 | 第117-118页 |
文献综述 PI3K/Akt/mTOR信号通路在糖尿病视网膜病变中的研究进展与展望 | 第118-127页 |
参考文献 | 第123-127页 |
在读期间公开发表的学术论文、专著及科研成果 | 第127-131页 |