摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-11页 |
英文缩略词 | 第11-12页 |
目录 | 第12-14页 |
第一章 前言 | 第14-16页 |
第二章 实验材料 | 第16-19页 |
·细胞株 | 第16页 |
·主要试剂 | 第16-18页 |
·主要仪器与设备 | 第18-19页 |
第三章 实验方法 | 第19-32页 |
·细胞培养 | 第19页 |
·细胞复苏 | 第19页 |
·细胞传代 | 第19页 |
·细胞冻存 | 第19页 |
·细胞形态观察 | 第19-20页 |
·DAPI 细胞核荧光染色 | 第20页 |
·MTT 法检测细胞增殖活性 | 第20页 |
·流式细胞术检测细胞周期分布及细胞凋亡 | 第20-21页 |
·Western Blotting 检测蛋白变化情况 | 第21-23页 |
·A549 细胞全蛋白的提取 | 第21页 |
·BCA 法测定蛋白浓度 | 第21-22页 |
·SDS-PAGE 分离蛋白 | 第22页 |
·免疫印迹(Western Blotting)分析 | 第22-23页 |
·图像分析 | 第23页 |
·免疫荧光染色 | 第23-25页 |
·样品制备 | 第23-24页 |
·固定 | 第24页 |
·孵育一抗 | 第24页 |
·孵育二抗 | 第24页 |
·荧光显微镜上观察 | 第24页 |
·注意事项 | 第24-25页 |
·双向电泳 | 第25-27页 |
·细胞样品的制备 | 第25页 |
·细胞全蛋白除盐 | 第25页 |
·Bradford 法测定蛋白浓度 | 第25-26页 |
·第一向等电聚焦(IEF) | 第26页 |
·第二向SDS 电泳 | 第26-27页 |
·PCR 检测基因水平 | 第27-30页 |
·荧光定量PCR 引物的设计合成 | 第27-28页 |
·提取细胞总RNA | 第28页 |
·RNA 的电泳鉴定 | 第28-29页 |
·逆转录 | 第29页 |
·PCR 扩增 | 第29-30页 |
·用siRNA 技术沉默pml 和wrap53 后检测p53 基因和蛋白水平 | 第30-32页 |
·永久转染实验步骤 | 第30-31页 |
·瞬时转染实验步骤 | 第31-32页 |
第四章 实验结果 | 第32-61页 |
·白藜芦醇对野生型A549 细胞作用的形态学观察 | 第32-33页 |
·白藜芦醇对野生型A549 细胞生长的影响 | 第33-34页 |
·细胞凋亡的DAPI 检测 | 第34页 |
·流式细胞技术分析细胞周期 | 第34-36页 |
·Western Blotting 检测不同浓度白藜芦醇作用野生型A549 细胞后,对P53,PML,Bcl-2,Bax 蛋白的变化 | 第36-39页 |
·Western Blotting 检测100μM 白藜芦醇作用野生型A549 细胞后,不同时间段对P53,PML,Bcl-2,Bax 蛋白的变化 | 第39-41页 |
·Western Blotting 检测200μM 白藜芦醇作用野生型A549 细胞后,不同时间段对P53,PML,Bcl-2,Bax 蛋白的变化 | 第41-44页 |
·免疫荧光检测原位PML 表达 | 第44-45页 |
·免疫荧光检测原位野生型A549 细胞PML 和P53,PML 和Wrap53,P53 和Wrap53 的结合 | 第45-47页 |
·双向电泳分析白藜芦醇诱导A549 细胞凋亡过程中蛋白变化 | 第47-49页 |
·实时定量PCR 检测基因野生型A549 细胞pml mRNA | 第49-51页 |
·稳定干涉PML 表达的A549 细胞后,检测PML 和P53 蛋白 | 第51-53页 |
·稳定干涉PML 基因表达的A549 细胞后,实时定量PCR 检测p53 和wrap53 mRNA | 第53-56页 |
·实时定量PCR 检测野生型A549 细胞p53 和wrap53 mRNA | 第56-60页 |
·瞬时沉默野生型A549 细胞wrap53 基因后,实时定量PCR 检测p53 基因水平 | 第60-61页 |
第五章 讨论 | 第61-65页 |
第六章 结论 | 第65-66页 |
参考文献 | 第66-71页 |
附录 | 第71-84页 |
综述 | 第84-92页 |
参考文献 | 第90-92页 |
个人简历 | 第92页 |
研究生期间论文发表情况 | 第92-93页 |
致谢 | 第93页 |