| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-14页 |
| 前言 | 第14-15页 |
| 一、Notch信号通路部分成员在脑胶质瘤中的表达 | 第15-43页 |
| ·材料和方法 | 第16-24页 |
| ·材料 | 第16-17页 |
| ·试验方法 | 第17-24页 |
| ·结果 | 第24-35页 |
| ·RT-PCR结果 | 第24-28页 |
| ·人脑胶质瘤组织芯片免疫组化染色检测Notch表达 | 第28-33页 |
| ·Western Blot检测人脑胶质瘤中Notch的表达 | 第33-35页 |
| ·讨论 | 第35-42页 |
| ·Notch信号转导通路的构成及功能 | 第35-38页 |
| ·Notch信号通路与肿瘤的关系 | 第38-40页 |
| ·Notch信号通路与胶质瘤的关系 | 第40-42页 |
| ·小结 | 第42-43页 |
| 二、导入外源性Notch2对人脑胶质瘤细胞系U251,A172生长抑制的体外研究 | 第43-79页 |
| ·材料和方法 | 第44-50页 |
| ·材料 | 第44页 |
| ·方法 | 第44-50页 |
| ·结果 | 第50-69页 |
| ·人脑胶质瘤细胞系U251,A172细胞转染Notch2的鉴定 | 第50-54页 |
| ·Notch2对U251,A172细胞增殖的影响 | 第54-56页 |
| ·流式细胞仪检测细胞周期结果 | 第56-58页 |
| ·流式细胞仪检测细胞凋亡结果 | 第58-59页 |
| ·Transwell体外侵袭实验 | 第59-60页 |
| ·Western Blot检测相关基因 | 第60-69页 |
| ·讨论 | 第69-78页 |
| ·Notch家族成员对肿瘤细胞生物学特性的影响 | 第69-74页 |
| ·Notch2与胶质瘤中其它重要信号通路的关系 | 第74-77页 |
| ·Notch2与肿瘤干细胞的关系 | 第77-78页 |
| ·小结 | 第78-79页 |
| 三、转入外源性Notch2及siRNA靶向抑制Notch1对U251人脑胶质瘤细胞系生长抑制的体内研究 | 第79-96页 |
| ·材料和方法 | 第79-81页 |
| ·材料 | 第79页 |
| ·方法 | 第79-81页 |
| ·结果 | 第81-90页 |
| ·瘤组织块皮下接种动物成瘤率 | 第81-82页 |
| ·肿瘤生长情况 | 第82-85页 |
| ·Notch1 siRNA与Notch2质粒治疗后相关指标变化情况 | 第85-87页 |
| ·Notch1 siRNA及Notch2治疗后肿瘤干细胞标记的变化 | 第87-89页 |
| ·TUNEL原位凋亡检测 | 第89-90页 |
| ·讨论 | 第90-94页 |
| ·小结 | 第94-96页 |
| 四、基于Notch信号通路的脑肿瘤干细胞的研究 | 第96-125页 |
| ·材料和方法 | 第96-110页 |
| ·材料 | 第96-97页 |
| ·方法 | 第97-110页 |
| ·结果 | 第110-119页 |
| ·pRBS-EGFP载体的制备与鉴定 | 第110-111页 |
| ·使用pLenti6/V5-D-TOPO构建Lenti-RBS-EGFP慢病毒系统 | 第111-112页 |
| ·慢病毒Lenti-RBS-EGFP转染胶质母细胞瘤细胞系0505,KK | 第112-113页 |
| ·EGFP信号的Western Blot鉴定 | 第113-115页 |
| ·细胞的流式分选 | 第115-116页 |
| ·分选后细胞的Western blot检测 | 第116页 |
| ·免疫荧光染色 | 第116-118页 |
| ·利用甲基纤维素进行连续克隆形成试验 | 第118-119页 |
| ·讨论 | 第119-124页 |
| ·小结 | 第124-125页 |
| 结论 | 第125-126页 |
| 参考文献 | 第126-134页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第134-135页 |
| 综述 Notch信号通路与脑肿瘤 | 第135-148页 |
| 综述参考文献 | 第143-148页 |
| 致谢 | 第148-149页 |
