摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
目录 | 第8-12页 |
英文缩写词表 | 第12-13页 |
前言 | 第13-16页 |
第一章 慢性不可预见性应激引起SD大鼠心肌代谢轮廓的改变 | 第16-30页 |
第一节 慢性不可预见性应激模型的建立 | 第18-22页 |
1 材料与方法 | 第18-19页 |
·实验动物和饲养环境 | 第18页 |
·实验大鼠分组及药物干预 | 第18页 |
·慢性不可预见性应激抑郁模型的制备方法及样品采集 | 第18-19页 |
2 观察内容 | 第19页 |
·敞箱实验 | 第19页 |
·糖水偏好试验 | 第19页 |
3 统计学处理 | 第19页 |
4 蔗糖偏好、体重和敞箱实验结果 | 第19-20页 |
5 讨论 | 第20-22页 |
第二节 CUMS模型心肌代谢组学研究 | 第22-30页 |
1 仪器与材料 | 第22页 |
·仪器 | 第22页 |
·药品与试剂 | 第22页 |
2 样本和方法 | 第22-23页 |
·待测样品的制备 | 第22-23页 |
·GC-MS测定方法 | 第23页 |
·统计学处理 | 第23页 |
3 结果 | 第23-27页 |
·GC/MS分析 | 第23-24页 |
·GC/MS数据分析 | 第24-25页 |
·PLS-DA模型建立以及生物标志物发现 | 第25-27页 |
4 讨论 | 第27-29页 |
5 结论 | 第29-30页 |
第二章 CUMS引起脂代谢紊乱、以及脂联素和乙醛脱氢酶2表达的改变 | 第30-59页 |
第一节 舍曲林干预CUMS模型糖脂代谢的结果 | 第31-38页 |
1 材料与方法 | 第31-32页 |
·实验动物和饲养环境 | 第31页 |
·实验大鼠分组 | 第31页 |
·慢性不可预见性应激抑郁模型的制备方法及样品采集 | 第31-32页 |
2 行为学观察及血清生化测定 | 第32-33页 |
·敞箱实验 | 第32页 |
·糖水偏好试验 | 第32页 |
·血清糖脂生化检查 | 第32页 |
·BDNF RT-PCR测定 | 第32-33页 |
3 统计学处理 | 第33页 |
4 结果 | 第33-36页 |
·行为测试和脑源性神经营养因子(BDNF)表达 | 第33-34页 |
·血清糖脂代谢 | 第34-36页 |
5 讨论 | 第36-38页 |
第二节 CUMS大鼠心肌和海马脂联素系统的改变 | 第38-55页 |
1 血清脂联素检测 | 第39-40页 |
·材料方法 | 第39页 |
·样品和试剂的配制 | 第39-40页 |
·分析步骤 | 第40页 |
2 脂联素系统RT-PCR测定 | 第40-44页 |
·仪器 | 第40页 |
·试剂 | 第40页 |
·溶液配制 | 第40-41页 |
·RNA提取 | 第41-42页 |
·RNA反转录 | 第42页 |
·QRT-PCR引物序列 | 第42-43页 |
·PCR测定流程 | 第43页 |
·脂联素系统的扩增曲线和溶解曲线 | 第43-44页 |
3 脂联素系统的WESTERN Blot实验 | 第44-50页 |
·仪器试剂 | 第44-45页 |
·溶液配制 | 第45-48页 |
·样品制备 | 第48页 |
·蛋白浓度检测 | 第48-49页 |
·western blot | 第49-50页 |
4 结果 | 第50-54页 |
5 讨论 | 第54-55页 |
第三节 CUMS大鼠心肌和海马乙醛脱氢酶2的改变 | 第55-59页 |
1 材料方法 | 第56页 |
·仪器试剂 | 第56页 |
·RT-PCR测定 | 第56页 |
·免疫印迹分析 | 第56页 |
2 统计学处理 | 第56-57页 |
3 结果 | 第57-58页 |
4 讨论 | 第58页 |
5 结论 | 第58-59页 |
第三章 强迫游泳对CUMS模型大鼠代谢轮廓的影响 | 第59-84页 |
第一节 强迫游泳对抑郁的双向作用 | 第61-70页 |
1 材料与方法 | 第62-63页 |
·实验动物和饲养环境 | 第62页 |
·实验大鼠分组 | 第62页 |
·慢性不可预见性应激抑郁模型的制备方法及样品采集 | 第62-63页 |
·强迫游泳方法 | 第63页 |
2 行为学观察及血清生化测定 | 第63-64页 |
·敞箱实验 | 第63页 |
·糖水偏好试验 | 第63页 |
·血清糖脂生化检查 | 第63-64页 |
·BDNF RT-PCR测定 | 第64页 |
3 统计学处理 | 第64页 |
4 结果 | 第64-68页 |
·行为测试和脑源性神经营养因子(BDNF)表达 | 第64-66页 |
·血清糖脂代谢 | 第66-68页 |
5 讨论 | 第68-70页 |
第二节 基于UPLC-MS技术对CUMS和强迫游泳干预下血浆、尿液的代谢组学研究 | 第70-78页 |
1 实验方法 | 第70-72页 |
·试剂与材料 | 第70页 |
·样品处理 | 第70页 |
·样品分析 | 第70-71页 |
·数据处理 | 第71-72页 |
2 实验结果 | 第72-77页 |
·UPLC-MS代谢组学全扫描 | 第72-73页 |
·PLS-DA分析 | 第73-77页 |
3 讨论 | 第77-78页 |
第三节 代谢标志物的挖掘和分析 | 第78-84页 |
1 代谢物确证 | 第78页 |
2 生物标志物 | 第78-82页 |
3 讨论 | 第82-83页 |
4 结论 | 第83-84页 |
参考文献 | 第84-101页 |
综述 | 第101-111页 |
参考文献 | 第108-111页 |
攻读博士学位期间主要研究成果 | 第111-112页 |
致谢 | 第112页 |