| 摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 前言 | 第14-20页 |
| 1 河蚌多糖研究的背景 | 第14-15页 |
| 2 贝类多糖的生物学功能及应用状况 | 第15-17页 |
| ·抗肿瘤作用 | 第15-16页 |
| ·免疫调节作用 | 第16-17页 |
| ·其他作用 | 第17页 |
| 3 多糖研究的发展趋势 | 第17-19页 |
| ·动物多糖的分离纯化技术 | 第17页 |
| ·多糖的结构与功能的关系 | 第17-18页 |
| ·探索多糖的化学合成途径 | 第18页 |
| ·多糖质量标准控制 | 第18页 |
| ·多糖的临床应用 | 第18-19页 |
| 4 本研究的目的和意义 | 第19页 |
| 5 多糖研究的总体流程 | 第19-20页 |
| 第一章 河蚌多糖的提取 | 第20-29页 |
| 1 材料、试剂及仪器 | 第20页 |
| ·试验材料 | 第20页 |
| ·试验试剂 | 第20页 |
| ·试验仪器 | 第20页 |
| 2 试验方法 | 第20-22页 |
| ·河蚌丙酮粉制备 | 第20页 |
| ·中性盐提取河蚌多糖的单因素试验 | 第20-21页 |
| ·正交试验确定最佳提取条件 | 第21页 |
| ·河蚌总糖得率的计算 | 第21-22页 |
| ·总糖含量的测定 | 第22页 |
| 3 结果与讨论 | 第22-27页 |
| ·总糖含量的测定 | 第23-24页 |
| ·中性盐类提取河蚌多糖工艺条件的优化 | 第24-27页 |
| 4 本章小结 | 第27-29页 |
| 第二章 河蚌多糖的分离纯化 | 第29-37页 |
| 1 材料 | 第29页 |
| ·主要试验试剂与材料 | 第29页 |
| ·试验仪器 | 第29页 |
| 2 方法 | 第29-32页 |
| ·河蚌粗多糖纯化方法一 | 第29-31页 |
| ·河蚌粗多糖纯化方法二——高速逆流色谱 | 第31-32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-36页 |
| ·河蚌粗多糖过DE-52纤维柱后的洗脱曲线 | 第32页 |
| ·APS Ⅰ a过Sephadex G-200柱的洗脱曲线 | 第32-33页 |
| ·紫外吸收光谱图 | 第33-34页 |
| ·HPLC检测APS Ⅰ和APS Ⅱ纯度 | 第34-35页 |
| ·高速逆流色谱纯化结果 | 第35-36页 |
| 4 讨论 | 第36页 |
| 5 本章小结 | 第36-37页 |
| 第三章 河蚌多糖体外抗氧化活性研究 | 第37-44页 |
| 1 试验动物、试剂和仪器 | 第37-38页 |
| ·试验动物 | 第37页 |
| ·试验试剂 | 第37页 |
| ·主要仪器 | 第37-38页 |
| 2 试验方法 | 第38-40页 |
| ·河蚌多糖体外抗羟自由基(~·OH)的作用 | 第38页 |
| ·河蚌多糖对H_2O_2诱导红细胞氧化溶血的影响 | 第38-39页 |
| ·河蚌多糖体外抗肝组织自发性脂质过氧化作用 | 第39页 |
| ·河蚌多糖体外抗超氧离子(O_2~(·-))作用 | 第39页 |
| ·河蚌多糖体外总抗氧化作用 | 第39页 |
| ·数据分析 | 第39-40页 |
| 3 结果 | 第40-42页 |
| ·河蚌多糖体外抗羟自由基(~·OH)的清除作用 | 第40页 |
| ·河蚌多糖对H_2O_2诱导红细胞氧化溶血作用的影响 | 第40-41页 |
| ·河蚌多糖体外抗肝组织自发性脂质过氧化的影响 | 第41页 |
| ·河蚌多糖体外抗超氧离子(O_2~(·-))和总抗氧化作用 | 第41-42页 |
| 4 讨论 | 第42-43页 |
| 5 本章小结 | 第43-44页 |
| 第四章 河蚌多糖对罗非鱼免疫功能及抗氧化性能的影响 | 第44-52页 |
| 1 材料 | 第44-45页 |
| ·试验药品 | 第44页 |
| ·试验动物 | 第44页 |
| ·主要仪器 | 第44页 |
| ·试验日粮 | 第44-45页 |
| 2 方法 | 第45-46页 |
| ·试验池的处理 | 第45页 |
| ·药饵的制作及分组 | 第45页 |
| ·试验动物的处理 | 第45页 |
| ·日常管理 | 第45页 |
| ·采血 | 第45-46页 |
| ·血清中免疫指标测定 | 第46页 |
| ·血清中抗氧化指标的测定 | 第46页 |
| ·数据处理与分析 | 第46页 |
| 3 结果 | 第46-50页 |
| ·河蚌多糖对罗非鱼免疫指标的影响 | 第46-48页 |
| ·河蚌多糖对罗非鱼血清抗氧化指标的影响 | 第48-50页 |
| 4 讨论 | 第50-51页 |
| ·河蚌多糖对罗非鱼免疫指标的影响 | 第50-51页 |
| ·河蚌多糖对罗非鱼血清抗氧化指标的影响 | 第51页 |
| 5 本章小结 | 第51-52页 |
| 第五章 APS Ⅰ对罗非鱼外周血淋巴细胞增殖的影响 | 第52-59页 |
| 1 材料 | 第52页 |
| ·试验动物 | 第52页 |
| ·试验仪器 | 第52页 |
| ·试验试剂 | 第52页 |
| 2 方法 | 第52-55页 |
| ·试验试剂配制 | 第52-53页 |
| ·试验用品的清洗与消毒 | 第53页 |
| ·外周血淋巴细胞的分离 | 第53-54页 |
| ·淋巴细胞转移刺激指数的测定 | 第54-55页 |
| 3 结果与分析 | 第55-57页 |
| ·罗非鱼外周血淋巴细胞的收集和培养 | 第55-56页 |
| ·河蚌纯多糖对外周血淋巴细胞转移刺激指数的影响 | 第56-57页 |
| 4 讨论 | 第57-58页 |
| 5 本章小结 | 第58-59页 |
| 第六章 APS Ⅰ的组成和结构的初步研究 | 第59-67页 |
| 1 材料 | 第59页 |
| ·试验试剂 | 第59页 |
| ·主要仪器 | 第59页 |
| 2 方法 | 第59-60页 |
| ·薄层层析分析APS Ⅰ的单糖组成 | 第59页 |
| ·APS Ⅰ的元素分析 | 第59-60页 |
| ·红外光谱分析APS Ⅰ的官能团 | 第60页 |
| ·核磁共振分析APS Ⅰ | 第60页 |
| ·HPIC分析硫酸根离子 | 第60页 |
| 3 结果与讨论 | 第60-66页 |
| ·薄层层析分析APS Ⅰ的单糖组成 | 第60-61页 |
| ·APS Ⅰ的元素分析 | 第61页 |
| ·红外光谱分析 | 第61-63页 |
| ·核磁共振分析 | 第63-66页 |
| ·HPIC检测硫酸根离子 | 第66页 |
| 4 本章小结 | 第66-67页 |
| 总结 | 第67-68页 |
| 本研究的创新点 | 第68页 |
| 有待进一步深入研究的问题 | 第68-69页 |
| 附录 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-76页 |
| 缩略词表 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
