| 摘要 | 第1-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 缩写词(Abbreviation) | 第16-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-30页 |
| 1 国内外研究进展 | 第18-26页 |
| ·黑茶保健功能研究 | 第18-19页 |
| ·高通量药物筛选(HTS) | 第19-22页 |
| ·核受体(NR)的研究 | 第20页 |
| ·过氧化物酶体增殖物激活受体(PPARs) | 第20-21页 |
| ·法尼酯衍生物X受体(FXR)与肝脏x受体(LXR) | 第21-22页 |
| ·高速逆流色谱技术(HSCCC) | 第22-26页 |
| ·高速逆流色谱技术在植物活性成分分离上的应用 | 第23-25页 |
| ·生物碱类 | 第23页 |
| ·有机酸 | 第23页 |
| ·黄酮类 | 第23-24页 |
| ·醌类 | 第24页 |
| ·多酚类、木质素类、香豆素类及其他 | 第24-25页 |
| ·高速逆流色谱技术在茶叶成分分离上的应用 | 第25-26页 |
| ·黑茶脂溶性色素的研究 | 第26页 |
| 2 本研究的目的与意义 | 第26-28页 |
| 3 研究内容与技术路线 | 第28-30页 |
| ·研究内容 | 第28页 |
| ·黑茶生理活性的高通量筛选评价 | 第28页 |
| ·黑茶成分的高速逆流色谱分离 | 第28页 |
| ·黑茶脂溶性色素分析 | 第28页 |
| ·茯砖茶金花中脂溶性荧光物质的分离与鉴定 | 第28页 |
| ·技术路线 | 第28-30页 |
| ·黑茶组分的分离及生理活性高通量筛选评价技术路线图 | 第28-29页 |
| ·黑茶脂溶性色素高效薄层分析 | 第29页 |
| ·茯砖茶金花中脂溶性荧光物质的研究 | 第29-30页 |
| 第二章 黑茶化学成分的初级分离及分析 | 第30-37页 |
| 1 材料与方法 | 第30-32页 |
| ·实验材料、仪器与试剂 | 第30-31页 |
| ·茶叶材料 | 第30页 |
| ·主要仪器设备 | 第30页 |
| ·试剂 | 第30-31页 |
| ·实验方法 | 第31-32页 |
| ·黑茶化学成分提取及初分 | 第31页 |
| ·95%乙醇提取及初分 | 第31页 |
| ·热水浸提法 | 第31页 |
| ·儿茶素、没食子酸与咖啡碱的HPLC检测 | 第31页 |
| ·色素的HPTLC分析 | 第31-32页 |
| ·点样 | 第31-32页 |
| ·板基及展开剂 | 第32页 |
| ·图像保存 | 第32页 |
| 2 结果与分析 | 第32-36页 |
| ·石油醚洗脱组分的HPTLC分析 | 第32-33页 |
| ·氯仿洗脱组分的HPTLC分析 | 第33-34页 |
| ·乙酸乙酯洗脱组分的HPLC分析 | 第34-35页 |
| ·乙酸乙酯洗脱组分中的目标物总量 | 第34页 |
| ·乙酸乙酯洗脱组分中的生物碱 | 第34页 |
| ·乙酸乙酯洗脱组分中的儿茶素 | 第34页 |
| ·乙酸乙酯洗脱组分中的没食子酸 | 第34-35页 |
| ·乙醇洗脱组分的HPLC分析 | 第35页 |
| ·黑茶水提取成分HPLC分析 | 第35-36页 |
| 3 结论 | 第36-37页 |
| 第三章 黑茶提取物对PPARs模型的作用 | 第37-46页 |
| 1 材料与方法 | 第37-40页 |
| ·试验材料 | 第37页 |
| ·试验细胞株及试剂 | 第37-38页 |
| ·主要仪器 | 第38页 |
| ·实验方法 | 第38-40页 |
| ·样品的处理 | 第38页 |
| ·MTS初筛操作流程 | 第38页 |
| ·筛选浓度的确定—四氮唑盐酶还原法 | 第38-39页 |
| ·实验原理 | 第38页 |
| ·MTS溶液的配制 | 第38-39页 |
| ·确定样品的筛选浓度(MTS法) | 第39页 |
| ·PPARs核受体模型筛选方法 | 第39-40页 |
| ·GFP纠正及计算公式 | 第40页 |
| 2 结果与分析 | 第40-45页 |
| ·加药量的确定 | 第40-42页 |
| ·PPARs核受体的高通量药物筛选 | 第42-45页 |
| ·黑茶组分对PPARγ核受体的激活能力 | 第42-43页 |
| ·黑茶组分对PPARδ核受体激活能力 | 第43-45页 |
| 3 结论 | 第45-46页 |
| 第四章 黑茶提取物对FXR及LXR核受体模型的作用 | 第46-52页 |
| 1 材料与方法 | 第46-47页 |
| ·试验材料 | 第46页 |
| ·试验细胞株及试剂 | 第46页 |
| ·试验方法 | 第46-47页 |
| 2 结果与分析 | 第47-50页 |
| ·黑茶组分对FXR核受体激活模型的激活能力 | 第47-48页 |
| ·黑茶组分对FXR核受体抑制模型的抑制能力 | 第48-49页 |
| ·黑茶组分对LXR核受体模型的激活能力 | 第49-50页 |
| 3 结论 | 第50-52页 |
| ·金花对LXR核受体以及FXR核受体具有较好的活性作用 | 第50页 |
| ·氯仿洗脱组分对LXR激活模型、FXR激活模型的作用较强 | 第50页 |
| ·六堡茶、普洱茶及青砖茶具有较好的FXR抑制剂的筛选前景 | 第50-51页 |
| ·普洱茶具有良好调节脂类及糖代谢的作用。 | 第51页 |
| ·沱茶乙酸乙酯洗脱组分具有增加FXR受体抑制敏感性的作用 | 第51-52页 |
| 第五章 黑茶提取物对炎症因子分泌模型抑制的作用 | 第52-55页 |
| 1 材料与方法 | 第52-53页 |
| ·试验材料 | 第52页 |
| ·试验细胞株及试剂 | 第52页 |
| ·炎症因子分泌抑制实验方法 | 第52-53页 |
| ·炎症因子分泌抑制的实验程序 | 第52页 |
| ·炎症因子分泌抑制实验加药方案 | 第52-53页 |
| 2 结果与分析 | 第53-54页 |
| 3 结论 | 第54-55页 |
| 第六章 黑茶提取物抗消化道肿瘤的作用 | 第55-61页 |
| 1 材料与方法 | 第55-56页 |
| ·试验材料 | 第55页 |
| ·试验细胞株及试剂 | 第55页 |
| ·实验方法 | 第55-56页 |
| ·肿瘤细胞模型生长抑制实验流程 | 第55-56页 |
| ·肿瘤细胞模型生长抑制实验加药方案 | 第56页 |
| 2 结果与分析 | 第56-60页 |
| ·黑茶对肿瘤细胞SGC-7901的抑制作用 | 第56-58页 |
| ·黑茶组分对肿瘤细胞SGC-7901的抑制作用 | 第56-58页 |
| ·金花及对照样品对肿瘤细胞SGC-7901的抑制作用 | 第58页 |
| ·黑茶对肿瘤细胞HCT-8的抑制作用作用 | 第58-60页 |
| ·黑茶组分对肿瘤细胞HCT-8的抑制作用 | 第58-59页 |
| ·金花及对照样品对肿瘤细胞HCT-8的抑制作用 | 第59-60页 |
| 3 结论 | 第60-61页 |
| ·金花具有很强的消化道肿瘤抑制作用 | 第60页 |
| ·黑茶的乙酸乙酯洗脱组分对消化道肿瘤的抑制作用最强 | 第60页 |
| ·黑茶对HCT-8与SGC-7901的最适抑制组分不同 | 第60-61页 |
| 第七章 黑茶组分的高速逆流色谱分离 | 第61-76页 |
| 1 材料与方法 | 第61-62页 |
| ·试验材料、仪器及试剂 | 第61页 |
| ·实验材料 | 第61页 |
| ·仪器 | 第61页 |
| ·试剂 | 第61页 |
| ·实验方法 | 第61-62页 |
| ·HPLC检测 | 第61-62页 |
| ·HPTLC分析方法 | 第62页 |
| ·分配系数K_D的计算 | 第62页 |
| ·HSCCC方法 | 第62页 |
| ·HSCCC工作方式 | 第62页 |
| ·HSCCC系统平衡 | 第62页 |
| ·固定相的保留率 | 第62页 |
| ·HSCCC分析 | 第62页 |
| 2 结果与分析 | 第62-75页 |
| ·HSCCC分离黑茶组分的溶剂体系的选择 | 第62-65页 |
| ·Oka溶剂体系设计 | 第62-63页 |
| ·溶剂体系的初步选择 | 第63-64页 |
| ·黑茶HSCCC分析溶剂体系的确立 | 第64-65页 |
| ·黑茶乙酸乙酯洗脱组分的HSCCC分离 | 第65-68页 |
| ·黑茶水提取成分的HSCCC分离 | 第68-72页 |
| ·水提取成分极性分析 | 第68页 |
| ·沱茶水提取成分的HSCCC双向洗脱分离 | 第68-69页 |
| ·黑茶水提取成分的高速逆流色谱双向洗脱分离 | 第69-72页 |
| ·高速逆流色谱峰的物质检测 | 第72-75页 |
| ·乙酸乙酯洗脱组分HSCCC分离峰1的HPTLC分析 | 第72-73页 |
| ·HSCCC分离峰的HPLC检测 | 第73-74页 |
| ·乙酸乙酯洗脱组分的HSCCC峰6的气质联用分析 | 第74-75页 |
| 3 结论 | 第75-76页 |
| ·HPTLC适合于HSCCC溶剂系统的初选 | 第75页 |
| ·乙酸乙酯-水为系统溶剂可一次性从黑茶中分离没食子酸、咖啡碱及茶碱 | 第75页 |
| ·双向洗脱法可以缩短HSCCC分析时间 | 第75-76页 |
| 第八章 黑茶脂溶性色素的高效薄层色谱分析 | 第76-88页 |
| 1 材料与方法 | 第76-77页 |
| ·实验方法 | 第76-77页 |
| ·色素提取方法 | 第76页 |
| ·脂溶性色素的HPTLC分析方法 | 第76-77页 |
| 2 结果与讨论 | 第77-87页 |
| ·黑茶脂溶性色素的HPTLC分析 | 第77-78页 |
| ·可见光下的黑茶脂溶性色素带 | 第77页 |
| ·黑茶脂溶性色素在366nm、254nm波长下的图像 | 第77-78页 |
| ·黑茶脂溶性色素的光谱吸收特征分析 | 第78-84页 |
| ·黑茶脂溶性色素的差异性及与黑茶花色品种的关系分析 | 第84-87页 |
| ·黑茶脂溶性色素的差异性 | 第84-85页 |
| ·黑茶脂溶性色素总含量的差异 | 第84页 |
| ·叶绿素及其降解产物的差异性 | 第84-85页 |
| ·类胡萝卜素类脂溶性色素分析 | 第85页 |
| ·黑茶脂溶性色素差异原因分析 | 第85-86页 |
| ·加工方式差异大 | 第85页 |
| ·渥堆过程会造成脂溶性色素降解。 | 第85-86页 |
| ·六堡茶的加工方式可能有利于某些色素的转化与保存 | 第86页 |
| ·微生物可能参与了黑茶脂溶性色素的转化 | 第86页 |
| ·脂溶性色素与黑茶花色品种的关系 | 第86-87页 |
| 3 结论 | 第87-88页 |
| 第九章 金花中脂溶性荧光物质的分析 | 第88-98页 |
| 1 材料与方法 | 第88-89页 |
| ·实验材料、仪器与试剂 | 第88页 |
| ·脂溶性物质提取方法 | 第88页 |
| ·脂溶性物质的HPTLC分析方法 | 第88-89页 |
| ·点样 | 第88页 |
| ·扫描 | 第88-89页 |
| ·荧光物质制备 | 第89页 |
| ·硅胶薄层板的制备 | 第89页 |
| ·点样设置 | 第89页 |
| ·展开剂的配制 | 第89页 |
| ·荧光物质制备流程 | 第89页 |
| 2 结果与分析 | 第89-97页 |
| ·金花中脂溶性荧光物质HPTLC分析 | 第89-91页 |
| ·脂溶性荧光物质的硅胶薄层制备及光谱特征检测 | 第91-93页 |
| ·脂溶性荧光物质制备 | 第91页 |
| ·脂溶性荧光物质光谱特征 | 第91-93页 |
| ·气-质联用对荧光物质的分析 | 第93-97页 |
| ·R_f=0.27处荧光物质的GC-MS分析结果 | 第93-96页 |
| ·R_f=0.58处物质GC-MS分析结果 | 第96-97页 |
| 3 结论 | 第97-98页 |
| 全文结论 | 第98-102页 |
| 论文创新点 | 第102-103页 |
| 展望 | 第103-104页 |
| 参考文献 | 第104-114页 |
| 附件1 高通量药物筛选原始数据 | 第114-127页 |
| 附件2 黑茶脂溶性色素HPTLC分析报告 | 第127-150页 |
| 致谢 | 第150-151页 |
| 个人简介 | 第151页 |
| 博士在读期间发表的学术论文及取得的学术成果 | 第151-152页 |
