| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-57页 |
| ·引言 | 第12页 |
| ·单细胞分析简介 | 第12-16页 |
| ·细胞和单细胞分析 | 第12-14页 |
| ·单细胞分析的意义及必要性 | 第14-15页 |
| ·单细胞分析的历史 | 第15-16页 |
| ·单细胞分析的现状 | 第16页 |
| ·基于CE 的单细胞分析技术 | 第16-31页 |
| ·CE | 第16-17页 |
| ·单细胞分析的常规步骤 | 第17-26页 |
| ·单细胞进样 | 第17-22页 |
| ·单细胞裂解 | 第22页 |
| ·单细胞分离 | 第22-23页 |
| ·单细胞检测 | 第23-26页 |
| ·LIF 检测 | 第23-24页 |
| ·电化学方法 | 第24-25页 |
| ·质谱方法 | 第25-26页 |
| ·CE-LIF 在单细胞分析中的应用 | 第26-30页 |
| ·代谢产物分析 | 第26页 |
| ·蛋白质分析 | 第26-28页 |
| ·神经肽分析 | 第28页 |
| ·酶活性分析 | 第28-29页 |
| ·核酸分析 | 第29-30页 |
| ·功能表征 | 第30页 |
| ·CE-LIF 在单细胞分析应用中的展望 | 第30-31页 |
| ·其它的单细胞分析检测技术及其应用 | 第31-36页 |
| ·流式细胞术 | 第31-32页 |
| ·微流控芯片 | 第32-33页 |
| ·超微电极电化学分析法 | 第33-34页 |
| ·单细胞的光学成像技术 | 第34页 |
| ·拉曼光谱 | 第34-35页 |
| ·微米技术和纳米技术 | 第35页 |
| ·酶放大免疫检测 | 第35页 |
| ·扫描热棱镜检测 | 第35-36页 |
| ·单细胞分析发展趋势 | 第36-37页 |
| ·多药耐药性 | 第37-39页 |
| ·多药耐药性机理 | 第37-38页 |
| ·跨膜糖蛋白和多药耐药性 | 第38页 |
| ·针对Pgp 诱导的多药耐药性的对策 | 第38-39页 |
| ·碳纳米管简介 | 第39-41页 |
| ·碳纳米管 | 第39-40页 |
| ·CNT 的结构 | 第40页 |
| ·CNT 的特性 | 第40页 |
| ·CNT 作为药物运输载体在多药耐药性中的应用 | 第40-41页 |
| ·本论文的选题依据 | 第41页 |
| 参考文献 | 第41-57页 |
| 第二章 CE-LIF 标定流式细胞仪高通量定量检测单细胞中的荧光物质 | 第57-83页 |
| ·引言 | 第57-60页 |
| ·实验部分 | 第60-65页 |
| ·仪器装置 | 第60-62页 |
| ·试剂 | 第62页 |
| ·细胞培养 | 第62-63页 |
| ·K562 细胞Rho123 流入实验 | 第63页 |
| ·CE-LIF 的细胞进样 | 第63-64页 |
| ·细胞荧光背景 | 第64-65页 |
| ·实验结果与讨论 | 第65-77页 |
| ·CE-LIF 分析Rho123 的标准工作曲线 | 第65-66页 |
| ·CE-LIF 测定单细胞中Rho123 的流入曲线 | 第66-69页 |
| ·流式细胞仪测定细胞中Rho123 的流入曲线 | 第69-71页 |
| ·单个K562S 细胞流式细胞仪测定的荧光强度和CE-LIF 测定的Rho123 含量的关系 | 第71-72页 |
| ·细胞膜特性的表征 | 第72-75页 |
| ·潜在应用 | 第75-77页 |
| ·小结 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-83页 |
| 第三章 CE-LIF 分析单细胞跨膜糖蛋白 | 第83-106页 |
| ·引言 | 第83-85页 |
| ·实验部分 | 第85-87页 |
| ·仪器装置 | 第85页 |
| ·试剂 | 第85-86页 |
| ·细胞培养 | 第86页 |
| ·Pgp 荧光免疫 | 第86页 |
| ·单细胞实验 | 第86-87页 |
| ·结果与讨论 | 第87-100页 |
| ·羊抗鼠抗体免疫反应的表征 | 第87-88页 |
| ·检测限和重复性 | 第88页 |
| ·免疫反应的孵育条件 | 第88-92页 |
| ·穿孔剂的影响 | 第88-92页 |
| ·孵育时间的影响 | 第92页 |
| ·单细胞分析 | 第92-95页 |
| ·单细胞分析的相对标准偏差 | 第95页 |
| ·Pgp 含量和多药耐药性参数 | 第95-97页 |
| ·多细胞电泳分析 | 第97-100页 |
| ·小结 | 第100-101页 |
| 参考文献 | 第101-106页 |
| 第四章 CE-LIF 分析单个K562 细胞中的氧化多壁碳纳米管探针 | 第106-128页 |
| ·引言 | 第106-109页 |
| ·实验 | 第109-111页 |
| ·仪器装置 | 第109页 |
| ·材料 | 第109-110页 |
| ·细胞培养 | 第110-111页 |
| ·碳纳米管探针(CNTP)的制备 | 第111页 |
| ·CE-LIF 分析的单细胞进样 | 第111页 |
| ·结果和讨论 | 第111-124页 |
| ·CNTP 的表征 | 第111-113页 |
| ·用Anti–P-glycoprotein PE 标记细胞测定Pgp | 第113-115页 |
| ·CNTP 的CE-LIF 分析 | 第115-119页 |
| ·SDS 浓度对分离的影响 | 第115-116页 |
| ·pH 值对分离的影响 | 第116-117页 |
| ·离子强度对分离的影响 | 第117-119页 |
| ·CNTP 在K562A 和K562S 细胞中的分布 | 第119-124页 |
| ·单细胞分析 | 第124页 |
| ·小结 | 第124-125页 |
| 参考文献 | 第125-128页 |
| 第五章 CE-LIF 定量测定酵母中的氧化多壁碳纳米管探针 | 第128-150页 |
| ·引言 | 第128-129页 |
| ·实验 | 第129-130页 |
| ·仪器装置 | 第129页 |
| ·材料 | 第129页 |
| ·CNTP 的制备 | 第129-130页 |
| ·酵母和样品的准备 | 第130页 |
| ·结果和讨论 | 第130-145页 |
| ·氧化的CNT和CNTP的表征 | 第130-139页 |
| ·酵母的CE-LIF 分析 | 第139页 |
| ·CNTP 的CE-LIF 分析 | 第139-142页 |
| ·CNTP 对酵母细胞活力的影响 | 第142页 |
| ·孵育时间对CNTP 酵母流入量的影响 | 第142-143页 |
| ·CNTP 浓度对其酵母流入量的影响 | 第143-144页 |
| ·温度对CNTP 酵母流入量的影响 | 第144-145页 |
| ·表观渗透系数 | 第145页 |
| ·潜在应用 | 第145-146页 |
| ·小结 | 第146页 |
| 参考文献 | 第146-150页 |
| 作者简介 | 第150页 |
| 攻读博士学位期间论文发表情况如下 | 第150-153页 |
| 致谢 | 第153页 |
