缩写词(Abbreviation) | 第1-9页 |
摘要 | 第9-10页 |
Abstract | 第10-12页 |
前言 | 第12-14页 |
1 文献综述 | 第14-31页 |
·SAMDC研究进展 | 第14-21页 |
·多胺生物合成途径 | 第14-15页 |
·植物中已分离得到的SAMDC | 第15页 |
·SAMDC的分类 | 第15-16页 |
·SAMDC基因进化的关系 | 第16-17页 |
·植物中SAMDC的特征与功能研究 | 第17-19页 |
·SAMDC基因的表达调控 | 第19页 |
·SAMDC的生物学功能 | 第19-21页 |
·番茄红素的功能及研究进展 | 第21-27页 |
·番茄红素 | 第21-22页 |
·番茄红素的生理功能 | 第22-25页 |
·番茄红素的生物合成 | 第25-27页 |
·番茄果实品质分子改良研究进展 | 第27-31页 |
·番茄果实品质性状遗传特性 | 第27-28页 |
·番茄果实品质遗传调控与分子改良 | 第28-29页 |
·番茄抗逆性分子改良研究进展 | 第29-31页 |
2 番茄离体培养再生体系的优化 | 第31-36页 |
·材料与方法 | 第31-32页 |
·无菌苗的获得 | 第31页 |
·外植体及接种方式 | 第31页 |
·培养基的组成 | 第31-32页 |
·外植体的离体再生 | 第32页 |
·不定芽的继代培养 | 第32页 |
·再生植株的生根培养与移栽 | 第32页 |
·结果与分析 | 第32-34页 |
·不同激素配比对番茄子叶、下胚轴外植体不定芽分化频率的影响 | 第32-33页 |
·不同浓度 NAA对番茄再生苗不定根诱导的影响 | 第33-34页 |
·再生苗的移栽 | 第34页 |
·讨论 | 第34-36页 |
3 高效番茄遗传转化体系的建立以及SAMDC基因的转化 | 第36-43页 |
·材料与方法 | 第36-38页 |
·植物材料 | 第36页 |
·菌株与质粒 | 第36页 |
·抗生素的配制 | 第36-37页 |
·培养基 | 第37页 |
·含ySAMDC基因质粒表达载体菌液的活化、保存、制备 | 第37页 |
·子叶不定芽分化的Hyg筛选浓度的确定 | 第37-38页 |
·抗生素Cef的抑菌浓度的确定 | 第38页 |
·再生芽生根Hyg浓度的确定 | 第38页 |
·番茄转化植株的获得 | 第38页 |
·结果与分析 | 第38-41页 |
·番茄子叶不定芽分化的Hyg筛选浓度的确定 | 第38-39页 |
·抑菌剂 Cef对番茄子叶不定芽分化的影响 | 第39-40页 |
·再生芽生根Hyg浓度的确定 | 第40-41页 |
·转基因植株的获得 | 第41页 |
·讨论 | 第41-43页 |
·褐变 | 第41页 |
·抑菌剂Cef对番茄外植体分化的影响 | 第41-42页 |
·Hyg筛选浓度的确定 | 第42页 |
·预培养和共培养时间对植物遗传转化效果的影响 | 第42-43页 |
4 番茄YSAMDC基因转化植株的检测 | 第43-53页 |
·材料与方法 | 第43-48页 |
·植物材料与主要试剂 | 第43页 |
·植物总 DNA、RNA的提取及质量检测 | 第43-45页 |
·转化植株的PCR检测 | 第45-46页 |
·转化植株的RT-PCR检测 | 第46-48页 |
·转化植株的X-Gluc组织化学染色检测 | 第48页 |
·结果与分析 | 第48-51页 |
·番茄基因组DNA和 RNA的提取 | 第48-49页 |
·转化植株的PCR检测 | 第49-50页 |
·转化植株的RT-PCR检测 | 第50页 |
·X-Gluc组织化学染色检测 | 第50-51页 |
·讨论 | 第51-53页 |
5 十字花科植物SAMDC基因同源序列的克隆与进化分析 | 第53-65页 |
·植物材料与方法 | 第53-58页 |
·试验材料与主要试剂 | 第53-54页 |
·植物总DNA提取方法(SDS法) | 第54-55页 |
·PCR引物的设计 | 第55页 |
·PCR扩增及其产物克隆、测序 | 第55-58页 |
·SAMDC同源基因的序列差异分析 | 第58页 |
·十字花科植物系统进化分析 | 第58页 |
·结果与分析 | 第58-64页 |
·SAMDC同源序列的扩增和克隆 | 第58页 |
·SAMDC同源基因的序列比对 | 第58-63页 |
·根据SAMDC基因同源性分析十字花科植物物种进化关系 | 第63-64页 |
·讨论 | 第64-65页 |
结论 | 第65-66页 |
参考文献 | 第66-73页 |
攻读硕士学位期间发表的文章目录 | 第73-74页 |
图版 | 第74-75页 |