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与氰戊菊酯抗性相关的棉铃虫细胞色素P450基因的克隆及异源表达

中文摘要第1-10页
英文摘要第10-13页
符号及缩略语等的说明第13-14页
第一章 文献综述第14-46页
 1.棉铃虫对拟除虫菊酯抗性概况第14-17页
  1.1 中国第14-15页
  1.2 印度第15-16页
  1.3 巴基斯坦第16页
  1.4 澳大利亚第16-17页
  1.5 西非第17页
 2.棉铃虫对拟除虫菊酯的抗性机理第17-23页
  2.1 表皮穿透下降第18-19页
  2.2 神经不敏感性第19-22页
  2.3 解毒代谢增强第22-23页
 3.细胞色素P450的结构与功能第23-32页
  3.1 细胞色素P450特征及催化机理第23-25页
  3.2 细胞色素P450氧化酶晶体结构第25-29页
  3.3 昆虫细胞色素P450基因的转录调控机制第29-32页
 4.昆虫细胞色素P450基因的过量表达与抗药性第32-36页
  4.1 CYP6D1第32-34页
  4.2 CYP6A1第34-35页
  4.3 CYP6G1第35-36页
 5.昆虫细胞色素P450的异源功能表达第36-46页
  5.1 大肠杆菌表达系统第37-41页
  5.2 酵母表达系统第41-43页
  5.3 杆状病毒介导的昆虫细胞表达系统第43-46页
第二章 氧化代谢增强在棉铃虫对氰戊菊酯抗性中的作用第46-62页
 1.材料与方法第47-50页
  1.1 供试昆虫第47-48页
  1.2 供试药剂第48页
  1.3 生物测定方法第48页
  1.4 细胞色素P450氧化酶活性测定第48-49页
  1.5 酯酶活性测定第49页
  1.6 谷胱甘肽转移酶活性测定第49页
  1.7 蛋白质含量测定第49-50页
  1.8 数据统计分析第50页
 2.结果与分析第50-58页
  2.1 八种常用杀虫剂对棉铃虫敏感品系(SCD)的毒力测定第50-51页
  2.2 YGF和YGFP品系对拟除虫菊酯的交互抗性第51页
  2.3 增效剂增效作用测定第51-56页
  2.4 细胞色素P450氧化酶、酯酶及谷胱甘肽转移酶活性测定第56-58页
 3.讨论第58-62页
  3.1 YGF和YGFP品系抗性机理第58-60页
  3.2 增效剂PBO应用于田间防治害虫第60-62页
第三章 棉铃虫细胞色素P450O-脱甲基活性与对氰戊菊酯抗性的关系第62-74页
 1.材料与方法第63-65页
  1.1 供试昆虫第63页
  1.2 供试药剂第63-64页
  1.3 生物测定方法第64页
  1.4 不同增溶剂存在条件下细胞色素P450氧化酶PNOD活性测定第64页
  1.5 细胞色素P450氧化酶PNOD活性测定第64页
  1.6 数据统计分析第64-65页
 2.结果与分析第65-71页
  2.1 六种增溶剂的增溶效果比较第65-68页
  2.2 不同棉铃虫品系对氰戊菊酯抗性水平与细胞色素P450氧化酶PNOD活性相关性分析第68-71页
 3.讨论第71-74页
  3.1 增溶剂在细胞色素P450氧化酶PNOD活性测定中的作用第71-72页
  3.2 棉铃虫细胞色素P450氧化酶PNOD活性与棉铃虫生化检测第72-74页
第四章 棉铃虫细胞色素P450基因克隆及mRNA差异表达第74-101页
 1.材料与方法第75-84页
  1.1 供试昆虫第75页
  1.2 总RNA提取及cDNA第一链合成第75-77页
   1.2.1 棉铃虫脂肪体总RNA提取第76页
   1.2.2 琼脂糖凝胶检测总RNA第76页
   1.2.3 cDNA第一链合成第76-77页
  1.3 引物设计及PCR扩增细胞色素P450 cDNA片段、克隆、测序第77-79页
  1.4 采用RACE策略克隆细胞色素P450基因全长第79-82页
  1.5 半定量PCR检测细胞色素P450基冈mRNA在脂肪体的表达量第82-84页
   1.5.1 cDNA第一链合成第82-83页
   1.5.2 半定量PCR第83页
   1.5.3 细胞色素P450基因mRNA表达量定量分析第83-84页
  1.6 引物设计及序列分析软件第84页
  1.7 棉铃虫细胞色素P450新基因注册第84页
 2.结果与分析第84-96页
  2.1 三个新细胞色素P450基因序列分析第84-85页
  2.2 翻译的氨基酸序列分析第85-95页
  2.3 半定量PCR分析第95-96页
 3.讨论第96-101页
第五章 棉铃虫细胞色素P450基因异源表达第101-117页
 1.材料与方法第102-111页
  1.1 供试昆虫第102页
  1.2 化学试剂第102页
  1.3 棉铃虫、酵母总RNA提取及cDNA第一链合成第102-104页
   1.3.1 PCR扩增CYP9A12和CYP9A14全长基因第103页
   1.3.2 CYP9A12、CYP9A14mRNA在酵母诱导培养中的表达第103-104页
  1.4 PCR产物纯化第104页
  1.5 双酶切酵母表达质粒、CYP9A12和CYP9A14第104-105页
  1.6 连接反应第105页
  1.7 转化大肠杆菌、扩大培养第105页
  1.8 质粒提取及BamHⅠ、EcoRⅠ酶切检测第105-106页
  1.9 质粒DNA双向测序验证第106页
  1.10 酵母菌株及培养第106-107页
  1.11 转化酵母细胞第107-108页
  1.12 诱导外源基因表达第108页
  1.13 酵母微粒体提取第108-109页
  1.14 不同诱导时段外源基因表达的检测第109-110页
   1.14.1 酵母培养第109页
   1.14.2 SDS-PAGE电泳检测表达的蛋白第109-110页
  1.15 酵母微粒体PNOD、ECOD及MROD活性测定第110-111页
  1.16 溴氰菊酯的离体代谢第111页
  1.17 数据统计分析第111页
 2.结果与分析第111-114页
  2.1 PCR检测外源细胞色素P450基因mRNA表达第111页
  2.2 SDS-PAGE检测表达的蛋白第111-114页
   2.2.1 CYP9A14在半乳糖不同时段诱导表达第111-113页
   2.2.2 半乳糖诱导16小时外源基因在酵母中的表达第113-114页
  2.3 重组酵母微粒体细胞色素P450氧化酶活性测定第114页
  2.4 溴氰菊酯的离体代谢作用第114页
 3.讨论第114-117页
全文总结第117-118页
参考文献第118-134页
附录:攻读学位期间发表的学术论文第134-135页
致谢第135页

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