| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT(英文摘要) | 第5-10页 |
| ABBREVIATION(缩写) | 第10-11页 |
| 第一章 引 言 | 第11-33页 |
| ·动物细胞凋亡 | 第11-16页 |
| ·植物细胞凋亡 | 第16-19页 |
| ·植物正常发育过程中的细胞凋亡 | 第16-19页 |
| ·植物抗逆反应与细胞凋亡 | 第19页 |
| ·植物细胞凋亡与动物细胞凋亡的区别 | 第19-22页 |
| ·凋亡方式 | 第20页 |
| ·抗氰呼吸 | 第20-22页 |
| ·叶绿体 | 第22页 |
| ·线粒体与细胞凋亡 | 第22-25页 |
| ·氧化磷酸化与ROS | 第23页 |
| ·ROS的产生部位 | 第23-24页 |
| ·ROS的攻击对象 | 第24页 |
| ·PTP孔的开放和Cyt c的释放 | 第24-25页 |
| ·褪黑激素 | 第25-28页 |
| ·多胺在植物生长过程中的作用 | 第28-31页 |
| ·本文的研究目的和内容 | 第31-33页 |
| 第二章 抗氰呼吸与植物凋亡的关系的研究 | 第33-60页 |
| ·引言 | 第33-35页 |
| ·实验材料与方法 | 第35-40页 |
| ·细胞培养与原生质体的制备 | 第35-36页 |
| ·凋亡的诱导 | 第36页 |
| ·细胞死亡率的测定 | 第36页 |
| ·DAPI与TUNEL检测 | 第36页 |
| ·DNA laddering | 第36-37页 |
| ·Caspase-3-like蛋白酶活性检测 | 第37页 |
| ·Cyt c的测定 | 第37页 |
| ·Annexin Ⅴ binding | 第37-38页 |
| ·线粒体的提取与纯化 | 第38页 |
| ·线粒体跨膜电位的测定 | 第38-39页 |
| ·线粒体呼吸的测定 | 第39页 |
| ·AOX的Western blot | 第39页 |
| ·原生质体体内ROS的检测 | 第39-40页 |
| ·实验结果 | 第40-55页 |
| ·乙烯诱导的番茄原生质体的凋亡 | 第40-42页 |
| ·番茄原生质体凋亡过程中磷酯酰丝氨酸的外翻 | 第42-43页 |
| ·乙烯诱导的线粒体跨膜电位的降低 | 第43-46页 |
| ·乙烯诱导的番茄原生质体凋亡过程中没有Cyt c的释放 | 第46页 |
| ·乙烯诱导的类Caspase-3活性激活与PARP的剪切 | 第46-51页 |
| ·抗氰呼吸参与乙烯诱导的番茄原生质体的凋亡 | 第51-54页 |
| ·抗氰呼吸的开启减少了体内ROS的产生 | 第54-55页 |
| ·讨论 | 第55-60页 |
| 第三章 褪黑激素在低温诱导的植物凋亡中作用的研究 | 第60-74页 |
| ·引言 | 第60-62页 |
| ·材料与方法 | 第62-64页 |
| ·细胞培养 | 第62页 |
| ·褪黑激素处理及凋亡的诱导 | 第62-63页 |
| ·细胞存活率的测定 | 第63页 |
| ·DAPI与TUNEL检测 | 第63页 |
| ·DNA laddering | 第63页 |
| ·电子显微镜观察 | 第63页 |
| ·体内ROS的检测 | 第63页 |
| ·多胺的检测 | 第63-64页 |
| ·实验结果 | 第64-71页 |
| ·褪黑激素的预处理可以抑制低温诱导的细胞凋亡 | 第64-68页 |
| ·褪黑激素对低温诱导凋亡的抑制不依赖其自由基清除功能 | 第68-69页 |
| ·褪黑激素通过提高体内多胺水平来实现其凋亡抑制作用 | 第69页 |
| ·与褪黑激素相似,外源多胺也可以抑制DNA的降解 | 第69-71页 |
| ·讨论 | 第71-74页 |
| 第四章 结论 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-91页 |
| 致谢及声明 | 第91-92页 |
| 个人简历、在学期间的研究成果及发表的学术论文 | 第92页 |
