| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-9页 |
| 缩略词 | 第9-11页 |
| 1 引言 | 第11-26页 |
| 1．1 目前国内外大白菜球色育种的现状 | 第11-12页 |
| 1．2 分子标记的特点及类型 | 第12-19页 |
| 1．2．1 分子标记的特点 | 第12-13页 |
| 1．2．2 分子标记的类型 | 第13-19页 |
| 1．3 分子标记技术在芸薹属植物遗传育种中的应用 | 第19-22页 |
| 1．3．1 构建遗传图谱 | 第19-20页 |
| 1．3．2 遗传多样性和亲缘关系的研究 | 第20页 |
| 1．3．3 绘制品种DNA指纹图谱 | 第20-21页 |
| 1．3．4 进行基因定位 | 第21-22页 |
| 1．3．5 分子标记辅助选择育种 | 第22页 |
| 1．4 基因标记的策略 | 第22-24页 |
| 1．4．1 利用一对目标基因间有差异的近等基因系来标记基因 | 第23-24页 |
| 1．4．2 用分离群体混合分组分析法（BSA）标记基因 | 第24页 |
| 1．5 本研究的目的与意义 | 第24-26页 |
| 2 材料与方法 | 第26-35页 |
| 2．1 实验材料 | 第26-28页 |
| 2．1．1 材料 | 第26页 |
| 2．1．2 酶及主要试剂 | 第26页 |
| 2．1．3 主要仪器 | 第26-27页 |
| 2．1．4 溶液配制 | 第27-28页 |
| 2．2 实验方法 | 第28-35页 |
| 2．2．1 基因组DNA提取 | 第28-29页 |
| 2．2．2 限制性内切酶分析 | 第29页 |
| 2．2．3 与桔红心性状连锁的RAPD标记的筛选 | 第29-30页 |
| 2．2．3．1 大白菜RAPD反应条件的优化 | 第29页 |
| 2．2．3．2 多态性RAPD引物的筛选 | 第29-30页 |
| 2．2．3．3 差异DNA片段的连锁分析 | 第30页 |
| 2．2．4 与桔红心性状连锁的SCAR标记的获得 | 第30-35页 |
| 2．2．4．1 特异片段的回收 | 第30-31页 |
| 2．2．4．2 RAPD（PCR）产物与载体的连接 | 第31页 |
| 2．2．4．3 大肠杆菌感受态细胞（DH5α）的制备 | 第31-32页 |
| 2．2．4．4 大肠杆菌感受态细胞（DH5α）的转化 | 第32页 |
| 2．2．4．5 特异DNA片段测序 | 第32页 |
| 2．2．4．6 SCAR引物的设计与合成 | 第32-33页 |
| 2．2．4．7 SCAR-PCR扩增 | 第33-35页 |
| 3 结果与分析 | 第35-48页 |
| 3．1 田间收获期调查球色的分离情况 | 第35页 |
| 3．2 基因组DNA提取的质量 | 第35-36页 |
| 3．3 RAPD反应条件的优化 | 第36-38页 |
| 3．3．1 MgCl2与dNTP的适宜浓度的选择 | 第36-37页 |
| 3．3．2 不同退火温度的影响 | 第37-38页 |
| 3．4 多态性RAPD引物的筛选分析 | 第38-41页 |
| 3．5 特异片段在DH群体及78F2单株中的分离情况 | 第41-44页 |
| 3．6 特异片段的测序结果及SCAR引物对设计 | 第44页 |
| 3．7 SCAR引物对在DH群体及78F2单株中的PCR分析 | 第44-48页 |
| 4 讨论 | 第48-51页 |
| 4．1 大白菜基因组DNA的提取 | 第48页 |
| 4．2 运用BSA法寻找RAPD标记的可行性分析 | 第48-49页 |
| 4．3 SCAR标记在辅助选择育种上的可行性 | 第49-51页 |
| 5 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-62页 |
| 附录 | 第62-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 攻读学位期间发表论文 | 第69页 |
