| 中文摘要 | 第1-10页 |
| 英文摘要 | 第10-16页 |
| 英文缩写注解 | 第16-18页 |
| 1 前言 | 第18-32页 |
| 2 材料 | 第32-39页 |
| ·细胞系 | 第32页 |
| ·引物 | 第32-34页 |
| ·培养液及血清 | 第34页 |
| ·主要试剂 | 第34-35页 |
| ·主要仪器 | 第35-36页 |
| ·主要抗体 | 第36页 |
| ·质粒 | 第36-39页 |
| 3 主要方法 | 第39-44页 |
| ·细胞全蛋白的提取和浓度测定 | 第39页 |
| ·Western-blottting方法和二次发光检测 | 第39页 |
| ·细胞总RNA的抽提和浓度测定 | 第39-40页 |
| ·逆转录PCR(RT-PCR) | 第40页 |
| ·基因组DNA抽提和浓度测定 | 第40页 |
| ·real-time PCR检测EB病毒拷贝数 | 第40-42页 |
| ·流式细胞周期检测 | 第42页 |
| ·感受态细菌的转化 | 第42页 |
| ·细菌培养和质粒抽提 | 第42-43页 |
| ·Lipofectamine TM 2000 transfection reagent介导的瞬间转染 | 第43-44页 |
| 4 结果 | 第44-57页 |
| ·TPA诱导可以促进B95-8细胞内EBV裂解复制水平明显上调 | 第44-45页 |
| ·在以TPA处理后,EB病毒阳性鼻咽癌细胞内病毒裂解复制水平提高 | 第45-48页 |
| ·在EBV阳性鼻咽癌细胞SUNE1内EBV发生裂解复制以后,ebv-miR-BHRF1-1的水平上调 | 第48页 |
| ·TPA诱导鼻咽癌细胞内EBV发生裂解复制后,p53表达和功能受到了抑制 | 第48-51页 |
| ·特异性抑制ebv-miR-BHRF1-1以后,TPA对鼻咽癌细胞内EBV裂解复制的诱导和抑制p53表达和功能的作用受到抑制 | 第51-53页 |
| ·过表达miR-BHRF1-1以后,鼻咽癌细胞内p53蛋白和mdm2的表达受到了抑制,而EBV裂解复制水平提高 | 第53-57页 |
| 5 分析与讨论 | 第57-60页 |
| 6 结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 综述 | 第68-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
| 攻读学位期间的主要研究成果 | 第78-79页 |
