| 摘要 | 第1-13页 |
| ABSTRACT | 第13-15页 |
| 符号说明 | 第15-17页 |
| 前言 | 第17-27页 |
| 1 绞股蓝概况 | 第17-19页 |
| ·绞股蓝的分布及科属 | 第17页 |
| ·绞股蓝的化学成分及药理活性 | 第17-19页 |
| ·绞股蓝皂苷药理活性研究 | 第17-18页 |
| ·绞股蓝多糖药理活性研究 | 第18页 |
| ·绞股蓝黄酮的药理活性研究 | 第18-19页 |
| ·绞股蓝的临床应用及开发前景 | 第19页 |
| 2 化学性肝损伤 | 第19-24页 |
| ·肝损伤与肝病 | 第19-20页 |
| ·化学性肝损伤的作用机制 | 第20-21页 |
| ·化学性肝损伤模型的建立 | 第21-24页 |
| 3 化学性肝损伤的治疗 | 第24-25页 |
| ·氧自由基清除剂 | 第24-25页 |
| ·肝药酶诱导剂 | 第25页 |
| ·钙通道阻滞剂 | 第25页 |
| ·肝细胞生长因子及肝细胞刺激因子 | 第25页 |
| 4 本课题的研究内容、意义和创新点 | 第25-27页 |
| 第一章 绞股蓝多糖的分离纯化及分子量测定 | 第27-39页 |
| 1 实验材料 | 第27页 |
| 2 试剂和仪器 | 第27-28页 |
| 3 实验方法 | 第28-30页 |
| ·绞股蓝多糖的制备 | 第28-29页 |
| ·绞股蓝多糖的分离 | 第29-30页 |
| ·1 DEAE-Sephrose离子交换柱层析 | 第29页 |
| ·凝胶柱层析分离 | 第29-30页 |
| ·脱盐 | 第30页 |
| ·绞股蓝多糖纯度检查 | 第30页 |
| ·绞股蓝多糖分子量的测定 | 第30页 |
| 4 结果 | 第30-35页 |
| ·绞股蓝粗多糖的制备 | 第30页 |
| ·绞股蓝多糖的分离 | 第30-33页 |
| ·DEAE-Sephrose离子交换柱层析 | 第30-31页 |
| ·凝胶柱层析分离 | 第31-33页 |
| ·脱盐 | 第33页 |
| ·绞股蓝多糖纯度检查 | 第33-34页 |
| ·绞股蓝多糖分子量的测定 | 第34-35页 |
| 5 讨论和总结 | 第35-39页 |
| 第二章 绞股蓝多糖对HL-7702细胞化学性肝损伤的保护作用 | 第39-53页 |
| 1 实验材料 | 第39页 |
| 2 试剂和仪器 | 第39页 |
| 3 方法 | 第39-41页 |
| ·细胞培养 | 第39-40页 |
| ·GPS-2和GPS-3对四氯化碳肝损伤的保护作用 | 第40-41页 |
| ·CCL_4诱导培养HL-7702细胞损伤病理模型的制备 | 第40页 |
| ·细胞的分组和药物的添加 | 第40页 |
| ·细胞存活率检查 | 第40页 |
| ·ALT、AST、MDA、SOD活性的测定 | 第40页 |
| ·Hoechst33342细胞凋亡形态学染色 | 第40-41页 |
| ·GPS-2和GPS-3对酒精性肝损伤的保护作用 | 第41页 |
| ·酒精最佳损伤浓度的确定 | 第41页 |
| ·药物的添加和酒精损伤 | 第41页 |
| ·细胞存活率检查 | 第41页 |
| ·ALT、AST、MDA、SOD活性的测定 | 第41页 |
| 4 结果 | 第41-50页 |
| ·GPS-2和GPS-3对四氯化碳肝损伤的保护作用 | 第41-47页 |
| ·CCl_4诱导培养HL-7702细胞损伤病理模型的制备 | 第41-42页 |
| ·GPS-2和GPS-3对HL-7702细胞存活率的影响 | 第42-43页 |
| ·GPS-2和GPS-3对CCl_4损伤后AST、ALT活性的影响 | 第43-45页 |
| ·GPS-2和GPS-3对CCl_4损伤MDA和SOD活性的影响 | 第45-46页 |
| ·Hoechst33342细胞凋亡形态学染色结果 | 第46-47页 |
| ·GPS-2和GPS-3对酒精性肝损伤的保护作用 | 第47-50页 |
| ·酒精最佳损伤浓度的确定 | 第47页 |
| ·GPS-2和GPS-3对HL-7702细胞存活率的影响 | 第47-48页 |
| ·GPS-2和GPS-3酒精损伤后AST和ALT活性的影响 | 第48-49页 |
| ·GPS-2和GPS-3对酒精损伤后MDA和SOD活性的影响 | 第49-50页 |
| 5 讨论和总结 | 第50-53页 |
| 第三章 绞股蓝多糖对大鼠肝原代细胞化学性损伤的保护作用 | 第53-65页 |
| 1 实验材料 | 第53页 |
| 2 试剂和仪器 | 第53-54页 |
| 3 方法 | 第54-58页 |
| ·药物及试剂的配制 | 第54页 |
| ·鼠尾胶原的制备 | 第54-55页 |
| ·培养板的预处理 | 第55页 |
| ·大鼠肝细胞原代培养 | 第55-56页 |
| ·GPS-3对CCl_4致肝原代细胞损伤的保护作用 | 第56-57页 |
| ·GPS-3对肝原代细胞的影响 | 第56页 |
| ·CCl_4对肝原代细胞最佳损伤浓度和最佳损伤时间的确定 | 第56页 |
| ·GPS-3对CCl_4致肝细胞损伤后细胞活力的影响 | 第56-57页 |
| ·GPS-3对CCl_4致肝细胞损伤后酶活力的影响 | 第57页 |
| ·GPS-3对酒精致肝原代细胞损伤的保护作用 | 第57-58页 |
| ·GPS-3对酒精致肝细胞损伤后细胞活力的影响 | 第57页 |
| ·GPS-3对酒精致肝细胞损伤后酶活力的影响 | 第57-58页 |
| 4 结果 | 第58-63页 |
| ·大鼠肝细胞原代培养 | 第58页 |
| ·GPS-3对大鼠肝原代细胞的影响 | 第58页 |
| ·GPS-3对大鼠肝原代细胞CCl_4损伤的保护作用 | 第58-61页 |
| ·CCl_4对肝原代细胞最佳损伤浓度和损伤时间的确定 | 第58-59页 |
| ·GPS-3对CCl_4致肝细胞损伤后细胞活力的影响 | 第59页 |
| ·GPS-3对CCl_4致肝细胞损伤后酶活力的影响 | 第59-61页 |
| ·GPS-3糖对大鼠肝原代细胞酒精性肝损伤的保护作用 | 第61-63页 |
| ·GPS-3对酒精致肝细胞损伤后细胞活力的影响 | 第61页 |
| ·GPS-3对酒精致肝细胞损伤后酶活力的影响 | 第61-63页 |
| 5 总结和讨论 | 第63-65页 |
| 第四章 绞股蓝多糖对小鼠化学性肝损伤的保护作用 | 第65-75页 |
| 1 实验材料 | 第65页 |
| 2 试剂和仪器 | 第65页 |
| 3 实验方法 | 第65-67页 |
| ·GPS-3对CCl_4肝损伤的保护作用 | 第65-66页 |
| ·CCl_4肝损伤模型的建立及给药 | 第65-66页 |
| ·血清ALT、AST检测 | 第66页 |
| ·肝脏组织中MDA及GSH检测 | 第66页 |
| ·肝组织病理切片的制作 | 第66页 |
| ·数据处理 | 第66页 |
| ·GPS-3对酒精肝损伤的保护作用 | 第66-67页 |
| ·酒精肝损伤模型的建立及给药 | 第66页 |
| ·血清ALT、AST检测 | 第66页 |
| ·肝脏组织中MDA及GSH检测 | 第66-67页 |
| ·肝组织病理切片的制作 | 第67页 |
| ·数据处理 | 第67页 |
| 4 结果 | 第67-73页 |
| ·GPS-3对小鼠CCl_4肝损伤的保护作用 | 第67-70页 |
| ·GPS-3对CCl_4肝损伤小鼠血清ALT及AST活性的影响 | 第67-68页 |
| ·GPS-3对CCl_4肝损伤小鼠肝组织MDA及GSH活性的影响 | 第68-69页 |
| ·GPS-3对CCl_4损伤后小鼠肝脏病理组织学变化的影响 | 第69-70页 |
| ·GPS-3对酒精性肝损伤小鼠的保护作用 | 第70-73页 |
| ·酒精性肝损伤小鼠的一般情况观察及死亡率 | 第70页 |
| ·GPS-3对酒精性肝损伤小鼠血清ALT及AST活性的影响 | 第70-71页 |
| ·GPS-3对酒精性肝损伤小鼠肝组织MDA及GSH活性的影响 | 第71-73页 |
| ·GPS-3对酒精致肝损伤后小鼠肝脏病理组织学变化的影响 | 第73页 |
| 5 总结和讨论 | 第73-75页 |
| 总结和展望 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 攻读硕士学位期间发表的文章 | 第84-85页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第85页 |
