| 中文摘要 | 第1-9页 |
| 英文摘要 | 第9-13页 |
| 符号说明 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 第一部 CD70在肝癌中的表达及其克隆表达 | 第17-41页 |
| 前言 | 第17-18页 |
| 1 材料 | 第18-23页 |
| ·质粒与菌种 | 第18页 |
| ·细胞 | 第18页 |
| ·主要试剂 | 第18-19页 |
| ·试剂盒 | 第19页 |
| ·DNA分子量 | 第19页 |
| ·PCR引物设计与合成 | 第19-20页 |
| ·其他试剂 | 第20-22页 |
| ·主要实验仪器 | 第22-23页 |
| 2 方法 | 第23-37页 |
| ·RT-PCR检测CD70在肝癌标本和肝癌细胞系中的表达 | 第23-25页 |
| ·重组质粒的构建及鉴定 | 第25-35页 |
| ·真核表达载体PRK-CD70和pcDNA3.0-CD70的体外表达研究 | 第35-37页 |
| 3 结果 | 第37-39页 |
| ·RT-PCR检测CD70在肝癌标本和肝癌细胞系中的表达 | 第37页 |
| ·重组质粒的构建及鉴定 | 第37-39页 |
| ·真核表达载体的体外表达研究 | 第39页 |
| 4 讨论 | 第39-41页 |
| 第二部分 CD70蛋白在肝癌细胞系中对活化淋巴细胞的增殖抑制作用研究 | 第41-47页 |
| 前言 | 第41-42页 |
| 1 材料 | 第42-43页 |
| ·细胞株 | 第42-43页 |
| ·主要试剂 | 第43页 |
| ·PCR引物设计与合成 | 第43页 |
| ·主要实验仪器 | 第43页 |
| 2 方法 | 第43-45页 |
| ·脂质体介导的CD70基因的转染 | 第43-44页 |
| ·CCK8方法检测CD70基因对活化Jurkat增殖的影响 | 第44页 |
| ·RT-PCR检测活化前后Jurkat CD27、Siva的表达情况 | 第44-45页 |
| 3 结果 | 第45-46页 |
| ·CD70在肝癌细胞中的表达对活化Jurkat细胞增殖的影响 | 第45-46页 |
| ·RT-PCR检测活化前后Jurkat CD27、Siva的表达情况 | 第46页 |
| 4.讨论 | 第46-47页 |
| 小结 | 第47-48页 |
| 附图 | 第48-57页 |
| 第一部分 附图 | 第48-54页 |
| 第二部分 附图 | 第54-57页 |
| 附录 质粒物理图谱 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 发表文章 | 第64-65页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第65页 |
