| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 插图和附表清单 | 第12-14页 |
| 缩略语索引 | 第14-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-34页 |
| ·神经退行性疾病 | 第16-19页 |
| ·神经退行性疾病简介 | 第16页 |
| ·帕金森疾病简介 | 第16-17页 |
| ·MPP~+与帕金森模型 | 第17-19页 |
| ·硫氧还蛋白 | 第19-23页 |
| ·硫氧还蛋白简介 | 第19-20页 |
| ·硫氧还蛋白的生理功能 | 第20-23页 |
| ·硫氧还蛋白保护神经元的作用 | 第23页 |
| ·CDK5与神经系统 | 第23-25页 |
| ·CDK5 | 第23-24页 |
| ·CDK5与帕金森疾病的相关性 | 第24-25页 |
| ·去极化以及KCl简介 | 第25-31页 |
| ·去极化简介 | 第25-29页 |
| ·KCl的作用 | 第29-31页 |
| ·蛋白免疫印迹Western Blot和MTT实验技术原理 | 第31-32页 |
| ·蛋白免疫印迹Western Blot原理 | 第31页 |
| ·MTT实验技术原理 | 第31-32页 |
| ·本论文研究的目的和意义以及研究策略 | 第32-34页 |
| ·本论文研究的目的和意义 | 第32-34页 |
| 第二章 KCl诱导硫氧还蛋白表达的信号通路研究 | 第34-55页 |
| ·引言 | 第34-36页 |
| ·实验技术路线 | 第36-38页 |
| ·材料 | 第38-41页 |
| ·实验细胞 | 第38页 |
| ·主要试剂 | 第38-39页 |
| ·主要试剂的配制 | 第39-40页 |
| ·仪器设备 | 第40-41页 |
| ·方法 | 第41-47页 |
| ·MTT实验组 | 第41页 |
| ·蛋白免疫印迹实验组 | 第41-42页 |
| ·提取细胞中的总蛋白 | 第42-43页 |
| ·样品的蛋白质定量(BCA法) | 第43页 |
| ·蛋白免疫印迹法实验步骤 | 第43-45页 |
| ·KCl刺激低分化PC12细胞 | 第45页 |
| ·启动子实验组 | 第45-47页 |
| ·实验结果 | 第47-52页 |
| ·KCl促进PC12细胞增殖 | 第47页 |
| ·KCl诱导硫氧还蛋白表达的剂量依赖性和时间依赖性 | 第47-48页 |
| ·KCl通过增加启动子区活性诱导硫氧还蛋白的表达 | 第48-49页 |
| ·KCl促进细胞分化 | 第49页 |
| ·MK-801阻断KCl对硫氧还蛋白的诱导 | 第49-50页 |
| ·KN-62阻断了KCl对硫氧还蛋白表达诱导 | 第50-51页 |
| ·PD98059阻断KCl对硫氧还蛋白的诱导 | 第51-52页 |
| ·分析和讨论 | 第52-55页 |
| 第三章 KCl诱导CDK5表达的信号通路研究 | 第55-65页 |
| ·引言 | 第55-56页 |
| ·实验技术路线 | 第56-57页 |
| ·材料 | 第57-58页 |
| ·实验细胞 | 第57页 |
| ·主要试剂 | 第57-58页 |
| ·主要溶液及配方(详见2.3.3) | 第58页 |
| ·仪器设备(详见2.3.4) | 第58页 |
| ·方法 | 第58-59页 |
| ·蛋白免疫印迹实验 | 第58-59页 |
| ·提取细胞中的总蛋白(详见2.4.1.3) | 第59页 |
| ·样品的蛋白质定量(BCA法)(详见2.4.1.4) | 第59页 |
| ·蛋白免疫印迹法实验步骤(详见2.4.1.5) | 第59页 |
| ·实验结果 | 第59-62页 |
| ·KCl诱导CDK5表达 | 第59-60页 |
| ·MK-801阻断KCl对CDK5的诱导 | 第60-61页 |
| ·KN-62阻断了KCl对CDK5的诱导 | 第61页 |
| ·PD98059阻断KCl对硫氧还蛋白的诱导 | 第61-62页 |
| ·分析和讨论 | 第62-65页 |
| 第四章 KCl诱导硫氧还蛋白和CDK5表达保护PC12细胞免受MPP+所致损伤的研究 | 第65-75页 |
| ·前言 | 第65-67页 |
| ·实验技术路线 | 第67-68页 |
| ·材料 | 第68-69页 |
| ·实验细胞 | 第68页 |
| ·主要试剂 | 第68-69页 |
| ·主要溶液及配方(详见2.3.3) | 第69页 |
| ·仪器设备(详见2.3.4) | 第69页 |
| ·方法 | 第69-70页 |
| ·MTT实验法 | 第69-70页 |
| ·细胞排板与药物刺激 | 第70页 |
| ·提取细胞中的总蛋白(详见2.4.1.3) | 第70页 |
| ·样品的蛋白质定量(BCA法)(详见2.4.1.4) | 第70页 |
| ·蛋白免疫印迹法实验步骤(详见2.4.1.5) | 第70页 |
| ·实验结果 | 第70-72页 |
| ·KCl保护PC12细胞免受MPP~+所致细胞毒性 | 第70-71页 |
| ·KCl回复MPP~+所致PC12细胞中硫氧还蛋白和CDK5表达 | 第71-72页 |
| ·分析和讨论 | 第72-75页 |
| 第五章 KCl诱导硫氧还蛋白和CDK5表达的相关性研究 | 第75-82页 |
| ·引言 | 第75-76页 |
| ·实验技术路线 | 第76-77页 |
| ·材料 | 第77-78页 |
| ·实验细胞 | 第77页 |
| ·主要试剂 | 第77-78页 |
| ·主要溶液及配方(详见2.3.3) | 第78页 |
| ·方法 | 第78-79页 |
| ·细胞排板与药物刺激 | 第78-79页 |
| ·提取细胞中的总蛋白(详见2.4.1.3) | 第79页 |
| ·样品的蛋白质定量(BCA法)(详见2.4.1.4) | 第79页 |
| ·蛋白免疫印迹法实验步骤(详见2.4.1.5) | 第79页 |
| ·实验结果 | 第79-81页 |
| ·KCl短时刺激对Trx和CDK5表达的影响 | 第79-80页 |
| ·Trx高表达PC12细胞中CDK5表达情况 | 第80-81页 |
| ·分析和讨论 | 第81-82页 |
| 第六章 结论 | 第82-84页 |
| ·证明了KCl诱导PC12细胞硫氧还蛋白表达的剂量和时间相关性 | 第82页 |
| ·证明了KCl诱导PC12细胞硫氧还蛋白表达的信号传导途径 | 第82页 |
| ·证明了KCl诱导PC12细胞CDK5表达的信号传导途径 | 第82页 |
| ·证明了KCl保护PC12细胞免受MPP~+所致损伤与Trx以及CDK #5相关 | 第82页 |
| ·初步证明了KCl诱导PC12细胞Trx和CDK5中二者相关性 | 第82-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-91页 |
| 附录A | 第91页 |
