| 高葡萄糖条件对胰岛β细胞株NIT-1拉曼光谱的变化和马铃薯球蛋白tuberin的影响 | 第1-14页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第一部分 胰岛β细胞株NIT-1的培养 | 第14-18页 |
| ·材料 | 第14-15页 |
| ·细胞:NOD鼠胰岛β细胞株NIT-1,由华中科技大学同济医学院赠送。 | 第14页 |
| ·主要仪器设备 | 第14页 |
| ·主要试剂 | 第14页 |
| ·配置试剂 | 第14-15页 |
| ·实验方法 | 第15-16页 |
| ·NIT-1细胞的复苏 | 第15页 |
| ·NIT-1细胞的培养 | 第15页 |
| ·NIT-1细胞的传代 | 第15页 |
| ·NIT-1细胞的冻存 | 第15-16页 |
| ·结果 | 第16-18页 |
| ·生长良好的NIT-1细胞 | 第16-18页 |
| 第二部分:拉曼光谱技术检测葡萄糖及罗格列酮干预下NIT-1细胞的变化 | 第18-27页 |
| ·材料 | 第18页 |
| ·主要设备 | 第18页 |
| ·试验方法 | 第18-20页 |
| ·细胞的培养及分组 | 第18页 |
| ·单细胞光镊拉曼光谱检测 | 第18-20页 |
| ·单细胞光镊拉曼光谱技术检测细胞 | 第20页 |
| ·光谱数据处理 | 第20页 |
| ·结果 | 第20-27页 |
| ·拉曼光谱的归属分析参见表2.1 | 第20-22页 |
| ·拉曼光谱分析11.1组NIT-1细胞培养至120小时细胞拉曼光谱的变化 | 第22-24页 |
| ·不同糖浓度的NIT-1细胞及加药后拉曼光谱变化的分析。(图2-3) | 第24-27页 |
| 第三部分:Western Blot检测不同浓度葡萄糖及罗格列酮干预下NIT-1细胞tuberin蛋白的变化 | 第27-33页 |
| ·材料 | 第27-28页 |
| ·主要设备 | 第27页 |
| ·配制试剂 | 第27-28页 |
| ·实验方法 | 第28-30页 |
| ·NIT-1细胞的培养与分组 | 第28页 |
| ·细胞总蛋白的提取 | 第28-29页 |
| ·Western Blot步骤 | 第29-30页 |
| ·Western Blot统计分析 | 第30页 |
| ·结果:Western Blot检测NIT细胞中tuberin蛋白的表达 | 第30-33页 |
| 讨论 | 第33-38页 |
| 结论 | 第38页 |
| 参考文献 | 第38-43页 |
| 综述 | 第43-53页 |
| 1、TSC-mTOR信号传导通路简介 | 第43-45页 |
| 2、TSC-mTOR信号通路与糖尿病及糖尿病肾病 | 第45-49页 |
| ·、TSC-mTOR信号通路与糖尿病胰岛素抵抗 | 第45-47页 |
| ·、TSC-mTOR信号通路与糖尿病肾病 | 第47-49页 |
| 3、小结与展望 | 第49-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
