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通窍活血汤含药脑脊液对谷氨酸损伤PC12细胞的保护作用研究

中文摘要第7-9页
英文摘要第9-10页
英文缩略词第11-13页
前言第13-15页
技术路线图第15-16页
1 实验材料第16-18页
    1.1 实验药材第16页
    1.2 实验仪器第16页
    1.3 实验试剂第16-18页
    1.4 实验动物第18页
    1.5 实验细胞株第18页
2 实验方法第18-25页
    2.1 PC12细胞的培养第18页
    2.2 供试品的制备第18-19页
        2.2.1 通窍活血汤汤剂的提取第18页
        2.2.2 大鼠脑缺血模型的制作第18-19页
        2.2.3 通窍活血汤含药脑脊液的制备第19页
    2.3 谷氨酸损伤PC12细胞模型的建立第19-20页
    2.4 不同浓度空白大鼠脑脊液培养基对PC12细胞增值度选择第20页
    2.5 实验分组第20页
    2.6 相差倒置显微镜观察第20页
    2.7 细胞增殖及活力检测第20-21页
    2.8 细胞膜通透性作用的检测第21页
        2.8.1 台盼兰染色第21页
        2.8.2 AO/EB染色第21页
        2.8.3 LDH活力检测第21页
    2.9 细胞氧化应激水平检测第21-22页
        2.9.1 NO检测第21页
        2.9.2 ROS检测第21-22页
        2.9.3 SOD、MDA检测第22页
    2.10 细胞能量代谢与线粒体功能变化检测第22页
        2.10.1 ATP酶活性检测第22页
        2.10.2 线粒体膜电位检测第22页
    2.11 细胞胞浆内游离钙离子检测第22-23页
    2.12 Western-blotting法检测细胞损伤蛋白Bcl-2、Bax第23-25页
        2.12.1 溶液配制第23-24页
        2.12.2 蛋白提取第24页
        2.12.3 Westen-blotting第24-25页
    2.13 统计处理方法第25页
3 实验结果第25-46页
    3.1 不同浓度谷氨酸对PC12细胞的增殖及活性影响第25-26页
    3.2 不同浓度大鼠空白脑脊液对PC12细胞增殖度影响第26-27页
    3.3 细胞形态变化第27-28页
    3.4 PC12细胞存活率测定结果第28-30页
    3.5 细胞膜通透性改变影响结果第30-34页
        3.5.1 AO/EB染色结果第30-31页
        3.5.2 台盼兰染色结果第31-32页
        3.5.3 LDH活力检测结果第32-34页
    3.6 细胞氧化应激水平变化第34-39页
        3.6.1 NO浓度检测结果第34-35页
        3.6.2 ROS浓度检测结果第35-37页
        3.6.3 SOD、MDA浓度检测结果第37-39页
    3.7 细胞能量代谢与线粒体功能变化第39-42页
        3.7.1 ATP酶活性检测结果第39-40页
        3.7.2 线粒体跨膜电位检测结果第40-42页
    3.8 细胞内游离钙离子浓度变化结果第42-44页
    3.9 Western-blotting法检测细胞损伤蛋白Bcl-2、Bax结果第44-46页
4 讨论第46-54页
    4.1 脑脊液药理学以及脑脊液浓度选择第46-47页
    4.2 大鼠急性脑缺血模型制作以及采集脑脊液实验要点第47-48页
    4.3 PC12细胞及其谷氨酸损伤模型在抗脑缺血性脑卒中研究方面的应用第48页
    4.4 通窍活血汤含药脑脊液对谷氨酸损伤的PC12细胞的保护作用第48-49页
    4.5 NO、ROS与神经细胞损伤第49-50页
    4.6 ATP酶活性与MDA、SOD与细胞损伤第50-51页
    4.7 线粒体跨膜电位与细胞损伤第51-52页
    4.8 钙超载与神经细胞兴奋性损伤第52页
    4.9 Bcl-2、Bax与细胞凋亡之间的关系第52-54页
总结第54-56页
参考文献第56-63页
综述第63-71页
    参考文献第68-71页
附录第71-72页
致谢第72页

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