| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩写词汇对照表 | 第11-21页 |
| 第1章 绪论 | 第21-37页 |
| 1.1 选题背景和选题意义 | 第21-22页 |
| 1.2 国内外研究进展 | 第22-35页 |
| 1.2.1 神经肽的研究概况 | 第22-24页 |
| 1.2.2 昆虫神经肽的研究进展 | 第24-29页 |
| 1.2.3 向肌肽orcokinin研究进展 | 第29-31页 |
| 1.2.4 昆虫神经肽受体研究进展 | 第31-34页 |
| 1.2.5 研究展望 | 第34-35页 |
| 1.3 主要研究内容 | 第35-36页 |
| 1.3.1 q-l~b突变基因的筛选 | 第35页 |
| 1.3.2 家蚕orcokinin(BmOK)基因的选择性剪接与表达分析 | 第35页 |
| 1.3.3 BmOK基因功能分析 | 第35页 |
| 1.3.4 两种类鹑斑突变体表皮组织相关基因表达分析 | 第35-36页 |
| 1.3.5 醛糖还原酶基因功能分析 | 第36页 |
| 1.4 技术路线图 | 第36-37页 |
| 第2章 Orcokinin是引起褐色类鹑斑q-l~b突变性状的主效基因 | 第37-45页 |
| 2.1 前言 | 第37页 |
| 2.2 材料与方法 | 第37-41页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第37页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第37-38页 |
| 2.2.3 实验试剂 | 第38页 |
| 2.2.4 实验方法 | 第38-40页 |
| 2.2.5 实验引物 | 第40-41页 |
| 2.3 结果与分析 | 第41-43页 |
| 2.3.1 Orcokinin基因表达分析 | 第41页 |
| 2.3.2 Orcokinin基因ORF在q-l~b中出现结构变异 | 第41-42页 |
| 2.3.3 Orcokinin基因变异位点在基因组上的克隆 | 第42-43页 |
| 2.4 讨论 | 第43-44页 |
| 2.5 结论 | 第44-45页 |
| 第3章 家蚕orcokinin(BmOK)基因选择性剪接与表达分析 | 第45-57页 |
| 3.1 前言 | 第45-46页 |
| 3.2 材料与方法 | 第46-47页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第46页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第46页 |
| 3.2.3 实验试剂 | 第46页 |
| 3.2.4 实验方法 | 第46-47页 |
| 3.2.5 引物列表 | 第47页 |
| 3.3 结果与分析 | 第47-54页 |
| 3.3.1 BmOK基因存在选择性剪接 | 第47-50页 |
| 3.3.2 BmOK基因全长mRNA克隆 | 第50-51页 |
| 3.3.3 BmOK基因表达谱分析 | 第51-52页 |
| 3.3.4 BmOKA基因在不同斑纹家蚕中的表达情况 | 第52-53页 |
| 3.3.5 BmOKA同源性分析 | 第53-54页 |
| 3.4 讨论 | 第54-55页 |
| 3.5 结论 | 第55-57页 |
| 第4章 BmOK基因功能分析 | 第57-65页 |
| 4.1 前言 | 第57页 |
| 4.2 材料与方法 | 第57-59页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第57页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第57页 |
| 4.2.3 实验试剂 | 第57-58页 |
| 4.2.4 实验方法 | 第58-59页 |
| 4.2.5 引物列表 | 第59页 |
| 4.3 结果与分析 | 第59-63页 |
| 4.3.1 RNAi | 第59-60页 |
| 4.3.2 成熟肽注射回复突变 | 第60-61页 |
| 4.3.3 CRISPR/cas9系统构建 | 第61-63页 |
| 4.3.4 类鹑斑突变体调控机制分析 | 第63页 |
| 4.4 讨论 | 第63-64页 |
| 4.5 结论 | 第64-65页 |
| 第5章 家蚕类鹑斑突变体四龄眠期表皮组织相关基因表达分析 | 第65-81页 |
| 5.1 前言 | 第65-66页 |
| 5.2 材料与方法 | 第66-69页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第66页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第66页 |
| 5.2.3 实验试剂 | 第66页 |
| 5.2.4 实验方法 | 第66-67页 |
| 5.2.5 实验引物 | 第67-69页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第69-79页 |
| 5.3.1 q-l~p突变体转录组测序数据基本情况 | 第69-70页 |
| 5.3.2 qRT-PCR验证测序数据准确性 | 第70-72页 |
| 5.3.3 q-l~p突变体中转录组差异倍数较大的基因 | 第72-73页 |
| 5.3.4 两种类鹑斑突变体中色素合成相关差异基因 | 第73-75页 |
| 5.3.5 q-l~p突变体中表皮蛋白基因差异表达分析 | 第75-76页 |
| 5.3.6 两种类鹑斑突变体中几丁质合成相关基因 | 第76-77页 |
| 5.3.7 两种类鹑斑突变体中尿酸运输差异表达基因 | 第77页 |
| 5.3.8 两种类鹑斑突变体中核受体差异表达基因 | 第77-78页 |
| 5.3.9 apt-like基因在两种类鹑斑突变体中的表达情况 | 第78-79页 |
| 5.4 结论 | 第79-81页 |
| 第6章 醛糖还原酶的下调表达影响了家蚕生长发育 | 第81-93页 |
| 6.1 前言 | 第81-82页 |
| 6.2 材料与方法 | 第82-84页 |
| 6.2.1 实验材料 | 第82页 |
| 6.2.2 实验仪器 | 第82页 |
| 6.2.3 实验试剂 | 第82页 |
| 6.2.4 实验方法 | 第82-83页 |
| 6.2.5 实验引物 | 第83-84页 |
| 6.3 结果与分析 | 第84-89页 |
| 6.3.1 .BmAR基因在q-l~p中表达量降低 | 第84-86页 |
| 6.3.2 .组织表达谱分析 | 第86页 |
| 6.3.3 RNAi降低BmAR基因的表达 | 第86-87页 |
| 6.3.4 家蚕血液山梨醇含量测定 | 第87-88页 |
| 6.3.5 BmAR基因氨基酸序列分析 | 第88-89页 |
| 6.4 讨论 | 第89-92页 |
| 6.5 结论 | 第92-93页 |
| 结论 | 第93-95页 |
| 创新点 | 第95-97页 |
| 展望 | 第97-99页 |
| 参考文献 | 第99-117页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第117-119页 |
| 致谢 | 第119-120页 |
