中文摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4页 |
第一章 绪论 | 第8-18页 |
1.1 缩略语说明 | 第8-9页 |
1.2 研究背景 | 第9-14页 |
1.2.1 心脏干细胞的发现与分类 | 第9-11页 |
1.2.2 心脏干细胞治疗心肌梗死的研究现状 | 第11-12页 |
1.2.3 心脏干细胞的应激预处理 | 第12-13页 |
1.2.4 心脏干细胞在体移植途径 | 第13-14页 |
1.3 研究框架 | 第14-18页 |
1.3.1 目的和意义 | 第14页 |
1.3.2 研究内容 | 第14-17页 |
1.3.3 创新点 | 第17-18页 |
第二章 获取高活性心肌球 | 第18-30页 |
2.1 实验材料 | 第18-22页 |
2.1.1 实验动物 | 第18-19页 |
2.1.2 主要试剂 | 第19-20页 |
2.1.3 主要试剂的配置 | 第20-21页 |
2.1.4 主要仪器 | 第21-22页 |
2.2 实验方法 | 第22-25页 |
2.2.1 心脏干细胞的原代培养 | 第22页 |
2.2.2 CSps培养 | 第22页 |
2.2.3 CSps代数与克隆形成数关系 | 第22页 |
2.2.4 含不同浓度心包腔积液的培养液刺激CSps | 第22-23页 |
2.2.5 CCK-8检测 | 第23页 |
2.2.6 实时定量PCR | 第23-24页 |
2.2.7 免疫荧光检测 | 第24-25页 |
2.2.8 CSps-基质水凝胶混悬液的制备及检测 | 第25页 |
2.2.9 数据统计分析 | 第25页 |
2.3 实验结果 | 第25-29页 |
2.3.1 CSps的培养 | 第25页 |
2.3.2 CSps的特征 | 第25-26页 |
2.3.3 不同浓度心包腔积液对CSps的刺激作用 | 第26-28页 |
2.3.4 基质水凝胶对CSps具有保护作用 | 第28-29页 |
2.4 结论 | 第29-30页 |
第三章 高活性心肌球治疗大鼠心肌梗死效果及其机制探究 | 第30-47页 |
3.1 实验材料 | 第30-33页 |
3.1.1 实验动物 | 第30页 |
3.1.2 主要试剂 | 第30-31页 |
3.1.3 主要试剂的配制 | 第31-33页 |
3.1.4 主要仪器 | 第33页 |
3.2 实验方法 | 第33-37页 |
3.2.1 急性心梗模型制备 | 第33-34页 |
3.2.2 CSps-基质水凝胶混悬液移植 | 第34页 |
3.2.3 大鼠心功能检测 | 第34页 |
3.2.4 小动物活体成像技术 | 第34-35页 |
3.2.5 心肌球-基质水凝胶混悬液治疗机制探讨 | 第35-36页 |
3.2.6 OPC液晶材料制备及CSps焦亡诱导培养 | 第36-37页 |
3.2.7 统计学分析 | 第37页 |
3.3 实验结果 | 第37-46页 |
3.3.1 心肌球-基质水凝胶悬液对大鼠心功能的改善作用 | 第37-38页 |
3.3.2 心肌球-基质水凝胶悬液改善大鼠心肌梗死后的心室重构 | 第38-39页 |
3.3.3 移植心肌球的存活与转归 | 第39-40页 |
3.3.4 心肌球-基质水凝胶悬液移植促进梗死区心肌细胞和血管生成 | 第40-42页 |
3.3.5 心包腔液体中生长因子的含量 | 第42-43页 |
3.3.6 心肌梗死后内源性心脏干细胞的激活 | 第43-44页 |
3.3.7 OPC培养表面对CSps细胞焦亡的诱导作用 | 第44-46页 |
3.4 结论 | 第46-47页 |
第四章 讨论 | 第47-53页 |
4.1 选择心肌球治疗大鼠急性心肌梗死 | 第47-48页 |
4.2 PFMI预刺激提高心肌球干性和分泌生长因子功能 | 第48-49页 |
4.3 基质水凝胶对离体心肌球的保护作用 | 第49页 |
4.4 诱导预刺激方法的进一步改进 | 第49-50页 |
4.5 选择心包腔内移植方式 | 第50-51页 |
4.6 内源性心脏干细胞的激活 | 第51-53页 |
第五章 总结与展望 | 第53-55页 |
5.1 课题总结 | 第53页 |
5.2 展望 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-60页 |
在校期间研究成果 | 第60-61页 |
课题研究经费基金项目 | 第61-62页 |
附录 | 第62-66页 |
致谢 | 第66页 |