| 英汉缩略语名词对照 | 第5-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 前言 | 第10-12页 |
| 1 实验材料与方法 | 第12-33页 |
| 1.1 实验材料 | 第12-14页 |
| 1.1.1 组织芯片 | 第12页 |
| 1.1.2 细胞系 | 第12页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第12-14页 |
| 1.1.4 主要实验仪器以及设备 | 第14页 |
| 1.2 实验方法及步骤 | 第14-33页 |
| 1.2.1 组织芯片（TMA）及免疫组化（IHC） | 第14-16页 |
| 1.2.2 细胞的培养 | 第16页 |
| 1.2.3 SRI siRNA转染 | 第16-17页 |
| 1.2.4 SRI siRNA转染后Western Blot验证sorcin蛋白的的表达量的改变 | 第17-21页 |
| 1.2.5 细胞迁移实验（划痕试验） | 第21-22页 |
| 1.2.6 细胞迁移实验 | 第22-23页 |
| 1.2.7 细胞侵袭实验 | 第23-24页 |
| 1.2.8 Sorcin基因敲低后对胃癌细胞的增殖的影响 | 第24-25页 |
| 1.2.9 蛋白样品制备及i TRAQ标记 | 第25-26页 |
| 1.2.10 固相p H梯度等电聚焦 | 第26页 |
| 1.2.11 质谱分析 | 第26-27页 |
| 1.2.12 实时定量RT-PCR检测 | 第27-31页 |
| 1.2.12.1 细胞RNA的提取 | 第27-28页 |
| 1.2.12.2 RNA的逆转录 | 第28-29页 |
| 1.2.12.3 RT-PCR检测引物下： | 第29-30页 |
| 1.2.12.4 在m RNA水平验证i TRAQ结果 | 第30-31页 |
| 1.2.13 CTSZ si RNA转染 | 第31页 |
| 1.2.14 收集AGS以及MKN28的胞质蛋白 | 第31-32页 |
| 1.2.15 Western Blot验证CTSZ敲除效率以及MMPS和P-STAT3的蛋白表达量的变化 | 第32-33页 |
| 1.2.16 统计分析 | 第33页 |
| 2 结果 | 第33-43页 |
| 2.1 在不同种类组织中sorcin的差异表达 | 第33-34页 |
| 2.2 sorcin在胃癌细胞迁移和侵袭中作用 | 第34-36页 |
| 2.3 差异表达蛋白检测 | 第36-39页 |
| 2.4 沉默CTSZ之后MMPS以及P-STAT3的变化 | 第39-40页 |
| 2.5 差异表达蛋白的验证以及通路的验证 | 第40-42页 |
| 2.6 胃癌细胞sorcin基因敲减对细胞增殖的影响 | 第42-43页 |
| 3 讨论 | 第43-46页 |
| 全文总结 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-52页 |
| 文献综述 Sorcin蛋白的研究进展 | 第52-58页 |
| 1.sorcin是pena EF hand一员 | 第52页 |
| 2.sorcin蛋白的位置与结构 | 第52-53页 |
| 3.sorcin的表达以及细胞循环中的作用 | 第53-54页 |
| 4.sorcin与肿瘤多耐药 | 第54页 |
| 5.Sorcin与肿瘤的迁移侵袭 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 攻读学位期间的研究成果及学术论文目录 | 第59页 |
