| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-10页 |
| 第1章 引言 | 第10-13页 |
| 1.1 神经病理疼痛 | 第10页 |
| 1.2 初级中枢--脊髓背角 | 第10-11页 |
| 1.3 T型钙通道 | 第11页 |
| 1.3.1 概述 | 第11页 |
| 1.3.2 Cav3与疼痛 | 第11页 |
| 1.4 星形胶质细胞与疼痛 | 第11-13页 |
| 第2章 材料与方法 | 第13-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第13-16页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第13页 |
| 2.1.2 实验主要仪器与耗材 | 第13-14页 |
| 2.1.3 实验主要试剂与抗体 | 第14-16页 |
| 2.2 实验主要试剂配制 | 第16-19页 |
| 2.2.1 免疫组化染色实验相关试剂 | 第16-17页 |
| 2.2.2 免疫印迹实验相关试剂 | 第17-19页 |
| 2.2.3 其他主要试剂配制 | 第19页 |
| 2.3 动物疼痛模型 | 第19-22页 |
| 2.3.1 大鼠福尔马林炎性痛模型制备 | 第19-20页 |
| 2.3.2 大鼠神经病理性疼痛模型制备 | 第20-21页 |
| 2.3.3 经腰椎连续鞘内注射给药 | 第21-22页 |
| 2.4 免疫组化染色 | 第22-24页 |
| 2.5 免疫印迹 | 第24-26页 |
| 2.5.1 提取组织蛋白 | 第24页 |
| 2.5.2 BCA蛋白定量 | 第24页 |
| 2.5.3 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第24-25页 |
| 2.5.4 转膜 | 第25-26页 |
| 2.5.5 目的蛋白的免疫检测 | 第26页 |
| 2.6 实时荧光定量PCR | 第26-28页 |
| 2.7 统计学分析 | 第28-30页 |
| 第3章 结果 | 第30-40页 |
| 3.1 福尔马林注射对SDH中Cav3的表达无影响 | 第30-32页 |
| 3.2 PSNL术后SDH中Cav3.2表达上调 | 第32-34页 |
| 3.3 SDH星形胶质细胞上Cav3.2的表达 | 第34-35页 |
| 3.4 PSNL大鼠Cav3.2上调先于GFAP染色的增强 | 第35-37页 |
| 3.5 连续鞘内注射米贝地尔和FC对Cav3.2与GFAP表达的影响 | 第37-40页 |
| 第4章 讨论 | 第40-44页 |
| 4.1 Cav3在疼痛传导中的作用 | 第40-42页 |
| 4.1.1 福尔马林炎性痛大鼠SDH的Cav3表达无变化 | 第40-41页 |
| 4.1.2 PSNL大鼠SDH的Cav3.2表达增加 | 第41-42页 |
| 4.2 Cav3.2的细胞亚型特异性表达 | 第42页 |
| 4.3 Cav3.2活化对星形胶质细胞激活的影响 | 第42-43页 |
| 4.4 小结 | 第43-44页 |
| 第5章 结论与展望 | 第44-45页 |
| 5.1 结论 | 第44页 |
| 5.2 展望 | 第44-45页 |
| 致谢 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-51页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第51-52页 |
| 综述 | 第52-59页 |
| 参考文献 | 第57-59页 |
