| 中文摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 目录 | 第8-11页 |
| 符号说明 | 第11-13页 |
| 第一部分 文献综述 | 第13-29页 |
| 第一章 维生素D及其内分泌调节机制 | 第13-17页 |
| 1 维生素D的代谢及生物活化 | 第13-14页 |
| 2 维生素D内分泌系统与钙磷代谢 | 第14-17页 |
| 2.1 甲状旁腺激素与钙磷代谢 | 第14-15页 |
| 2.2 降钙素与钙磷代谢 | 第15页 |
| 2.3 1α,25-(OH)_2D_3与钙磷代谢 | 第15-17页 |
| 第二章 维生素D与破骨细胞 | 第17-25页 |
| 1 破骨细胞形成及活化标志性蛋白及Ca~(2+)信号通路 | 第17-21页 |
| 1.1 破骨细胞形成及活化过程中的标志性蛋白 | 第17-20页 |
| 1.2 破骨细胞形成及活化过程中的Ca~(2+)信号通路 | 第20-21页 |
| 2 维生素D对破骨细胞标志性蛋白的调控 | 第21-23页 |
| 2.1 维生素D对整合素α_vβ_3的调控 | 第21-22页 |
| 2.2 维生素D对空泡型质子泵的调控 | 第22页 |
| 2.3 维生素D对Ⅱ型碳酸酐酶的调控 | 第22页 |
| 2.4 维生素D对组织蛋白酶K的调控 | 第22-23页 |
| 2.5 维生素D对抗酒石酸酸性磷酸酶的调控 | 第23页 |
| 2.6 维生素D对基质金属蛋白酶-9的调控 | 第23页 |
| 3 维生素D对破骨细胞形成与活化相关转录因子的调控 | 第23-25页 |
| 3.1 维生素D对转录因子c-Fos的调控 | 第23-24页 |
| 3.2 维生素D对转录因子NFATc1的调控 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-29页 |
| 第二部分 实验研究 | 第29-65页 |
| 第一章 诱导RAW264.7细胞分化为OC方法的建立 | 第29-38页 |
| 1 材料和方法 | 第29-32页 |
| 1.1 细胞株 | 第29页 |
| 1.2 主要试剂与仪器 | 第29-30页 |
| 1.3 溶液的配制 | 第30-31页 |
| 1.4 RAW264.7细胞培养 | 第31页 |
| 1.5 MTT法测定RAW264.7细胞增殖情况 | 第31页 |
| 1.6 破骨细胞TRAP染色及计数 | 第31页 |
| 1.7 骨片吸收陷窝检测 | 第31-32页 |
| 1.8 统计分析 | 第32页 |
| 2 结果 | 第32-36页 |
| 2.1 M-CSF与不同浓度RANKL对RAW264.7细胞增殖率的影响 | 第32页 |
| 2.2 TRAP阳性破骨细胞形态及数量 | 第32-35页 |
| 2.3 骨片吸收陷窝与面积分析 | 第35-36页 |
| 3 讨论 | 第36-38页 |
| 3.1 M-CSF与不同浓度RANKL对RAW264.7细胞增殖率的影响 | 第36页 |
| 3.2 M-CSF与不同浓度RANKL对TRAP阳性破骨细胞数量及骨吸收活性的影响 | 第36-38页 |
| 第二章 1α,25-(OH)_2D_3对OC形成及骨吸收活性的影响 | 第38-45页 |
| 1 材料与方法 | 第38-39页 |
| 1.1 细胞株 | 第38页 |
| 1.2 主要试剂与仪器 | 第38页 |
| 1.3 溶液的配制 | 第38页 |
| 1.4 RAW264.7细胞培养 | 第38页 |
| 1.5 MTT法测定1α,25-(OH)_2D_3对RAW264.7细胞增殖率的影响 | 第38-39页 |
| 1.6 破骨细胞TRAP染色及计数 | 第39页 |
| 1.7 骨片吸收陷窝检测 | 第39页 |
| 1.8 统计分析 | 第39页 |
| 2 结果 | 第39-43页 |
| 2.1 1α,25-(OH)_2D_3对RAW264.7细胞增殖率的影响 | 第39-40页 |
| 2.2 TRAP阳性破骨细胞形态及数量 | 第40-42页 |
| 2.3 骨片吸收陷窝与面积分析 | 第42-43页 |
| 3 讨论 | 第43-45页 |
| 3.1 1α,25-(OH)_2D_3对RAW264.7细胞增殖率的影响 | 第43-44页 |
| 3.2 1α,25-(OH)_2D_3对TRAP阳性破骨细胞数量及骨吸收活性的影响 | 第44-45页 |
| 第三章 1α,25-(OH)_2D_3对OC相关功能蛋白表达的影响 | 第45-54页 |
| 1 材料与方法 | 第45-49页 |
| 1.1 细胞株 | 第45页 |
| 1.2 主要试剂与仪器 | 第45页 |
| 1.3 溶液的配制 | 第45-46页 |
| 1.4 RAW264.7细胞培养 | 第46页 |
| 1.5 Western Blot检测1α,25-(OH)_2D_3对破骨细胞功能蛋白表达的影响 | 第46-49页 |
| 1.6 统计分析 | 第49页 |
| 2 结果 | 第49-52页 |
| 2.1 不同浓度1α,25-(OH)_2D_3对破骨细胞相关功能蛋白表达的影响 | 第49-50页 |
| 2.2 10~(-8)mol/L 1α,25-(OH)_2D_3处理不同时间对破骨细胞相关功能蛋白表达的影响 | 第50-52页 |
| 3 讨论 | 第52-54页 |
| 第四章 1α,25-(OH)_2D_3对OC关键转录因子表达的影响 | 第54-61页 |
| 1 材料与方法 | 第54-58页 |
| 1.1 细胞株 | 第54页 |
| 1.2 主要试剂与仪器 | 第54页 |
| 1.3 溶液的配制 | 第54-55页 |
| 1.4 RAW264.7细胞培养 | 第55页 |
| 1.5 Q-RT-PCR检测1α,25-(OH)_2D_3对破骨细胞关键转录因子的调控 | 第55-57页 |
| 1.6 统计分析 | 第57-58页 |
| 2 结果 | 第58-59页 |
| 2.1 总RNA纯度分析 | 第58页 |
| 2.2 不同浓度1α,25-(OH)_2D_3对破骨细胞关键转录因子表达的影响 | 第58-59页 |
| 2.3 10~(-8)mol/L 1α,25-(OH)_2D_3处理不同时间对破骨细胞关键转录因子表达的影响 | 第59页 |
| 3 讨论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-65页 |
| 全文结论 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第67-69页 |
