| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第12-22页 |
| 1.1 动物微生态制剂 | 第12-15页 |
| 1.1.1 动物微生态制剂的分类 | 第12页 |
| 1.1.2 动物微生态制剂的作用机理 | 第12-13页 |
| 1.1.3 动物微生态制剂目前存在的问题 | 第13页 |
| 1.1.4 微生态制剂在反刍动物中的应用 | 第13-15页 |
| 1.2 反刍动物瘤胃对秸秆的降解 | 第15-17页 |
| 1.2.1 秸秆利用现状 | 第15页 |
| 1.2.2 反刍动物的消化特点 | 第15页 |
| 1.2.3 瘤胃内的纤维素分解菌 | 第15-16页 |
| 1.2.4 微生物降解途径 | 第16页 |
| 1.2.5 瘤胃内的固氮菌 | 第16页 |
| 1.2.6 纤维素分解菌的和固氮菌协同作用 | 第16-17页 |
| 1.3 固态微生物菌剂的特点及制备 | 第17-20页 |
| 1.3.1 固态微生物菌剂的特点 | 第17页 |
| 1.3.2 冷冻干燥工艺原理 | 第17页 |
| 1.3.3 影响冷冻干燥效果的因素 | 第17-19页 |
| 1.3.4 冷冻干燥对细胞的损伤 | 第19-20页 |
| 1.3.5 室温干燥方法 | 第20页 |
| 1.4 研究的目的和意义 | 第20-22页 |
| 2 材料与方法 | 第22-32页 |
| 2.1 纤维素分解菌的分离、纯化与筛选 | 第22-23页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第22页 |
| 2.1.2 试验方法 | 第22-23页 |
| 2.2 固氮菌的分离、纯化与筛选 | 第23页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第23页 |
| 2.2.2 试验方法 | 第23页 |
| 2.3 混合菌株对瘤胃发酵作用的检验 | 第23-28页 |
| 2.3.1 试验材料 | 第23-24页 |
| 2.3.2 试验方法 | 第24-28页 |
| 2.4 菌株的干燥和贮存 | 第28-30页 |
| 2.4.1 试验材料 | 第29页 |
| 2.4.2 试验方法 | 第29-30页 |
| 2.5 干燥和贮存的分组实验设计 | 第30-31页 |
| 2.5.1 试验材料 | 第30页 |
| 2.5.2 试验方法 | 第30-31页 |
| 2.6 数据处理与统计分析 | 第31-32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-42页 |
| 3.1 纤维素分解菌和固氮菌的分离、筛选与鉴定 | 第32-34页 |
| 3.2 分离菌株的联合应用效果 | 第34页 |
| 3.3 干燥和贮存对菌株存活率的影响 | 第34-35页 |
| 3.4 干燥和贮存混合菌株添加对瘤胃体外发酵的影响 | 第35-42页 |
| 3.4.1 对发酵液PH值的影响 | 第35页 |
| 3.4.2 对发酵液NH_3-N浓度的影响 | 第35-36页 |
| 3.4.3 对发酵液菌体蛋白浓度的影响 | 第36-37页 |
| 3.4.4 对产气量的影响 | 第37页 |
| 3.4.5 对干物质降解率的影响 | 第37-38页 |
| 3.4.6 对体外培养VFA含量的影响 | 第38-41页 |
| 3.4.7 对NDF、ADF降解率的影响 | 第41-42页 |
| 4 讨论 | 第42-46页 |
| 4.1 分离菌株的联合应用效果 | 第42页 |
| 4.2 干燥和贮存对菌株存活率的影响 | 第42-43页 |
| 4.3 对发酵液PH值的影响 | 第43页 |
| 4.4 对发酵液NH_3-N和菌体蛋白浓度的影响 | 第43-44页 |
| 4.5 对产气量和干物质降解率的影响 | 第44页 |
| 4.6 对发酵液VFA的影响 | 第44-45页 |
| 4.7 对体外发酵秸秆NDF和ADF降解率的影响 | 第45-46页 |
| 5 结论 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第53页 |