| 中文摘要 | 第6-7页 |
| 英文摘要 | 第7页 |
| 前言 | 第9-14页 |
| 第一章 Tat-SmacN7融合肽对SK-BR-3细胞放射增敏作用 | 第14-29页 |
| 1.1 实验材料 | 第14-17页 |
| 1.1.1 细胞株 | 第14页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第14页 |
| 1.1.3 主要试剂缓冲液的配置 | 第14-16页 |
| 1.1.4 细胞培养耗材 | 第16页 |
| 1.1.5 主要仪器设备 | 第16-17页 |
| 1.2 实验方法 | 第17-22页 |
| 1.2.1 多肽合成及纯化 | 第17页 |
| 1.2.2 操作前准备 | 第17页 |
| 1.2.3 细胞培养 | 第17-20页 |
| 1.2.4 Tat-SmacN7融合肽进入细胞的能力的检测 | 第20页 |
| 1.2.5 MTT法检测Tat-SmacN7对乳腺癌SK-BR-3细胞的细胞毒性及作用特点 | 第20-21页 |
| 1.2.6 细胞克隆形成实验测Tat-SmacN7对肿瘤细胞的辐射增敏性 | 第21-22页 |
| 1.3 实验结果 | 第22-27页 |
| 1.3.1 Tat-SmacN7融合蛋白的合成及纯化 | 第22-24页 |
| 1.3.2 Tat-SmacN7融合肽进入细胞的能力实验结果 | 第24-25页 |
| 1.3.3 Tat-SmacN7对乳腺癌SK-BR-3细胞的细胞毒性及作用特点 | 第25-26页 |
| 1.3.4 Tat-SmacN7对肿瘤细胞的辐射增敏作用 | 第26-27页 |
| 1.4 讨论 | 第27-29页 |
| 第二章 Tat-SmacN7对SK-BR-3细胞放射增敏的作用机制 | 第29-40页 |
| 2.1 实验材料 | 第29-33页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第29页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第29页 |
| 2.1.3 主要试剂缓冲液的配置 | 第29-31页 |
| 2.1.4 细胞培养耗材 | 第31页 |
| 2.1.5 主要仪器设备 | 第31-33页 |
| 2.2 实验方法 | 第33-35页 |
| 2.2.1 细胞的培养 | 第33页 |
| 2.2.2 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第33-34页 |
| 2.2.3 单细胞凝胶电泳实验检测DNA修复 | 第34-35页 |
| 2.2.4 统计学方法 | 第35页 |
| 2.3 实验结果 | 第35-38页 |
| 2.3.1 Tat-SmacN7通过促进细胞凋亡对SK-BR-3细胞起放射增敏作用 | 第35-36页 |
| 2.3.2 Tat-SmacN7通过抑制照射后DNA修复对SK-BR-3细胞起放射增敏作用 | 第36-38页 |
| 2.4 讨论 | 第38-40页 |
| 第三章 Tat-SmacN7对SK-BR-3细胞放射增敏作用分子机制 | 第40-55页 |
| 3.1 实验材料 | 第40-46页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第40页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第40-42页 |
| 3.1.3 主要试剂缓冲液的配置 | 第42-44页 |
| 3.1.4 细胞培养耗材 | 第44页 |
| 3.1.5 主要仪器设备 | 第44-46页 |
| 3.2 实验方法 | 第46-50页 |
| 3.2.1 细胞的培养 | 第46页 |
| 3.2.2 免疫印迹(Western Blotting)检测Smac/DIABLO、XIAP等蛋白表达 | 第46-47页 |
| 3.2.3 SDS-PAGE凝胶电泳 | 第47-48页 |
| 3.2.4 RT-PCR检测XIAP、cIAP-1的mRNA变化 | 第48-50页 |
| 3.2.5 统计学方法 | 第50页 |
| 3.3 实验结果 | 第50-53页 |
| 3.3.1 SK-BR-3细胞内IAPs表达变化 | 第50-51页 |
| 3.3.2 SK-BR-3细胞内XIAP和cIAP-1的mRNA水平变化 | 第51-52页 |
| 3.3.3 SK-BR-3细胞内caspase活性变化 | 第52-53页 |
| 3.4 讨论 | 第53-55页 |
| 结论与展望 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-61页 |
| 综述 | 第61-70页 |
| 参考文献 | 第66-70页 |
| 缩略词表 | 第70-72页 |
| 在读期间第一作者发表的论文 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
