中英文缩写词对照 | 第6-8页 |
中文摘要 | 第8-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
1.前言 | 第14-16页 |
2.实验材料 | 第16-19页 |
2.1 实验动物和细胞 | 第16页 |
2.2 药品与试剂 | 第16-17页 |
2.3 仪器与设备 | 第17-19页 |
3.实验方法 | 第19-33页 |
3.1 大鼠神经胶质瘤模型的建立 | 第19页 |
3.2 大鼠MRI监测 | 第19-20页 |
3.3 临床神经胶质瘤样本 | 第20页 |
3.4 脑组织病理学检测 | 第20-21页 |
3.5 细胞培养 | 第21页 |
3.6 细胞转染 | 第21-22页 |
3.7 Westernblot | 第22-27页 |
3.8 荧光定量Real-timePCR(qRT-PCR) | 第27-29页 |
3.9 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第29-30页 |
3.10 Tunel染色检测细胞凋亡 | 第30页 |
3.11 Hochest33342染色检测细胞凋亡 | 第30页 |
3.12 双荧光素酶报告基因实验 | 第30-31页 |
3.13 免疫荧光 | 第31-32页 |
3.14 数据处理 | 第32-33页 |
4.实验结果 | 第33-60页 |
4.1 大鼠神经胶质瘤模型的建立 | 第33-34页 |
4.2 临床样本的病理学变化 | 第34-35页 |
4.3 miR-145在神经胶质瘤过程中的表达变化 | 第35-36页 |
4.4 miR-145对U87和U251两种细胞株凋亡的影响 | 第36-41页 |
4.5 BNIP3在神经胶质瘤中的表达变化 | 第41-44页 |
4.6 6BNIP3对U87和U251两种细胞株凋亡的影响 | 第44-49页 |
4.7 BNIP3可能是miR-145直接作用的靶基因之一 | 第49-54页 |
4.8 Notch信号通路在神经胶质瘤中的表达水平 | 第54-55页 |
4.9 miR-145和BNIP3对Notch信号通路的影响 | 第55-60页 |
5.讨论 | 第60-64页 |
6.结论 | 第64-65页 |
7.参考文献 | 第65-68页 |
附录 | 第68-69页 |
致谢 | 第69-70页 |
综述 | 第70-95页 |
References | 第88-95页 |