| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 常用缩写词中英文对照表 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 第一部分 白杨素对LPS诱导的小鼠急性肺损伤的保护作用 | 第15-31页 |
| 1 材料与方法 | 第15-16页 |
| 1.1 实验动物 | 第15页 |
| 1.2 主要试剂 | 第15页 |
| 1.3 药品 | 第15页 |
| 1.4 实验仪器 | 第15-16页 |
| 2 实验方法 | 第16-22页 |
| 2.1 实验设计及分组 | 第16页 |
| 2.1.1 药品的配置 | 第16页 |
| 2.1.2 小鼠急性肺损伤(ALI)模型的制备 | 第16页 |
| 2.1.3 实验分组 | 第16页 |
| 2.2 HE染色 | 第16-17页 |
| 2.2.1 实验步骤 | 第16-17页 |
| 2.2.2 评分标准 | 第17页 |
| 2.3 肺组织湿/干重比值(W/D)的检测 | 第17页 |
| 2.4 肺组织中髓过氧化酶(MPO)活性的检测 | 第17-18页 |
| 2.5 肺组织匀浆的制备 | 第18页 |
| 2.6 肺泡灌洗液(BALF)的制备 | 第18-19页 |
| 2.7 肺泡灌洗液(BALF)中蛋白含量的检测 | 第19页 |
| 2.8 ELISA试剂盒检测肺组织及BALF中IL-6、IL-1β、TNF-α含量 | 第19-20页 |
| 2.9 肺组织微血管通透性的测定 | 第20-21页 |
| 2.9.1 实验步骤 | 第20页 |
| 2.9.2 EBD标准曲线的制备 | 第20-21页 |
| 2.10 统计学处理 | 第21-22页 |
| 3 实验结果 | 第22-28页 |
| 3.1 小鼠肺组织HE染色结果 | 第22-23页 |
| 3.1.1 肺组织病理形态学观察 | 第22页 |
| 3.1.2 肺组织损伤评分 | 第22-23页 |
| 3.2 小鼠肺组织湿重/干重(W/D)比值 | 第23-24页 |
| 3.3 小鼠肺组织髓过氧化物酶(MPO)的活性 | 第24页 |
| 3.4 肺泡-毛细血管通透性的改变 | 第24-26页 |
| 3.4.1 小鼠肺组织中EBD含量 | 第24-25页 |
| 3.4.2 小鼠BALF中蛋白含量 | 第25-26页 |
| 3.5 小鼠肺组织与BALF中炎症因子的含量 | 第26-28页 |
| 3.5.1 小鼠肺组织IL-1β、IL-6和TNF-α含量 | 第26-27页 |
| 3.5.2 小鼠BALF中IL-1β、IL-6和TNF-α含量 | 第27-28页 |
| 4 讨论 | 第28-30页 |
| 5 结论 | 第30-31页 |
| 第二部分 白杨素对LPS诱导的ALI保护作用的机制研究 | 第31-45页 |
| 1 材料与方法 | 第31-33页 |
| 1.1 实验动物 | 第31页 |
| 1.2 主要试剂 | 第31-32页 |
| 1.3 药品 | 第32页 |
| 1.4 实验仪器 | 第32-33页 |
| 2 实验方法 | 第33-39页 |
| 2.1 实验设计及分组 | 第33页 |
| 2.1.1 药品的配置 | 第33页 |
| 2.1.2 小鼠急性肺损伤(ALI)模型的制备 | 第33页 |
| 2.1.3 实验分组 | 第33页 |
| 2.2 westernblot检测目的蛋白的表达 | 第33-35页 |
| 2.2.1 肺组织匀浆的制备 | 第33页 |
| 2.2.2 试剂配置 | 第33-34页 |
| 2.2.3 分离胶与浓缩胶的配置 | 第34页 |
| 2.2.4 实验步骤 | 第34-35页 |
| 2.3 抗氧化功能指标MDA、SOD和GSH-Px的检测 | 第35-39页 |
| 2.3.1 MDA含量检测 | 第36页 |
| 2.3.2 SOD活性检测 | 第36-37页 |
| 2.3.3 GSH-Px活性检测 | 第37-39页 |
| 3 实验结果 | 第39-42页 |
| 3.1 小鼠肺组织内质网应激标志蛋白表达水平 | 第39-40页 |
| 3.2 小鼠肺组织抗氧化功能指标 | 第40-41页 |
| 3.3 小鼠肺组织TXNIP/NLRP3的蛋白表达水平 | 第41-42页 |
| 4 讨论 | 第42-44页 |
| 5 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-50页 |
| 综述 | 第50-62页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 个人简介 | 第63页 |
