| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第一章 绪论 | 第13-58页 |
| 1.1 引言 | 第13页 |
| 1.2 蛋白质的毛细管电泳分离概述 | 第13-17页 |
| 1.2.1 毛细管区带电泳 | 第14-15页 |
| 1.2.2 胶束电动色谱 | 第15页 |
| 1.2.3 毛细管筛分电泳 | 第15-16页 |
| 1.2.4 毛细管电色谱 | 第16页 |
| 1.2.5 毛细管等点聚焦 | 第16-17页 |
| 1.2.6 毛细管等速电泳 | 第17页 |
| 1.2.7 亲和毛细管电泳 | 第17页 |
| 1.3 蛋白质在毛细管内壁的吸附现象 | 第17-23页 |
| 1.3.1 蛋白质在硅表面吸附的分子机制 | 第18-22页 |
| 1.3.2 蛋白质吸附对CE分离的影响 | 第22-23页 |
| 1.4 抑制蛋白质在毛细管内壁吸附的方法 | 第23-39页 |
| 1.4.1 极端pH值 | 第23页 |
| 1.4.2 缓冲液小分子添加剂 | 第23-26页 |
| 1.4.3 毛细管涂层 | 第26-39页 |
| 1.5 论文选题依据及研究内容 | 第39-41页 |
| 参考文献 | 第41-58页 |
| 第二章 季铵化纤维素动态涂层用于毛细管电泳分离碱性蛋白质的研究 | 第58-78页 |
| 2.1 引言 | 第58-59页 |
| 2.2 实验部分 | 第59-61页 |
| 2.2.1 仪器与试剂 | 第59页 |
| 2.2.2 季铵化纤维素的合成 | 第59-60页 |
| 2.2.3 背景电解质及蛋白质样品的配制 | 第60-61页 |
| 2.2.4 电渗流测定 | 第61页 |
| 2.2.5 蛋白质分离 | 第61页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第61-73页 |
| 2.3.1 季铵化纤维素取代度对电渗流及蛋白质分离的影响 | 第61-66页 |
| 2.3.2 季铵化纤维素分子量对电渗流及蛋白质分离的影响 | 第66-68页 |
| 2.3.3 pH值对电渗流及蛋白质分离的影响 | 第68-73页 |
| 2.3.4 季铵化纤维素与其它材料的比较 | 第73页 |
| 2.4 本章小结 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-78页 |
| 第三章 毛细管电泳分析牛奶中乳铁蛋白 | 第78-91页 |
| 3.1 引言 | 第78-79页 |
| 3.2 实验部分 | 第79-81页 |
| 3.2.1 仪器与试剂 | 第79页 |
| 3.2.2 背景电解质及蛋白质样品的配制 | 第79-80页 |
| 3.2.3 乳铁蛋白的提取 | 第80页 |
| 3.2.4 毛细管电泳分析 | 第80-81页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第81-87页 |
| 3.3.1 QC浓度的优化 | 第81-82页 |
| 3.3.2 pH值的优化 | 第82页 |
| 3.3.3 选择性考察 | 第82-84页 |
| 3.3.4 线性、检出限和定量限 | 第84-85页 |
| 3.3.5 固相萃取条件的优化 | 第85-86页 |
| 3.3.6 回收率和精密度 | 第86-87页 |
| 3.4 本章小结 | 第87-88页 |
| 参考文献 | 第88-91页 |
| 第四章 季铵化纤维素保护的金纳米粒子用于毛细管电泳分离碱性蛋白质 | 第91-105页 |
| 4.1 引言 | 第91-92页 |
| 4.2 实验部分 | 第92-95页 |
| 4.2.1 仪器与试剂 | 第92-93页 |
| 4.2.2 QC-Au NPs复合物的合成 | 第93-94页 |
| 4.2.3 背景电解质及蛋白质样品的配制 | 第94页 |
| 4.2.4 电渗流的测定 | 第94页 |
| 4.2.5 蛋白质分离 | 第94页 |
| 4.2.6 生物样品分析 | 第94-95页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第95-101页 |
| 4.3.1 金含量对电渗流及蛋白质分离的影响 | 第95-97页 |
| 4.3.2 复合物中QC季铵基团取代度对EOF及蛋白质分离的影响 | 第97-99页 |
| 4.3.3 背景电解质pH值对EOF和蛋白质分离的影响 | 第99-100页 |
| 4.3.4 重现性 | 第100-101页 |
| 4.3.5 生物样品分析 | 第101页 |
| 4.4 本章小结 | 第101-103页 |
| 参考文献 | 第103-105页 |
| 第五章 疏水改性季铵化纤维素动态涂层用于毛细管电泳分离碱性蛋白质 | 第105-121页 |
| 5.1 引言 | 第105-106页 |
| 5.2 实验部分 | 第106-109页 |
| 5.2.1 仪器与试剂 | 第106页 |
| 5.2.2 疏水改性季铵化纤维素的合成 | 第106-107页 |
| 5.2.3 背景电解质及蛋白质样品的配制 | 第107-108页 |
| 5.2.4 电渗流的测定 | 第108页 |
| 5.2.5 蛋白质分离 | 第108页 |
| 5.2.6 生物样品分析 | 第108-109页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第109-117页 |
| 5.3.1 HMQC浓度及十六烷基取代度对电渗流及蛋白质分离的影响 | 第109-112页 |
| 5.3.2 背景电解质pH值对电渗流及蛋白质分离的影响 | 第112-114页 |
| 5.3.3 重现性 | 第114页 |
| 5.3.4 生物样品分析 | 第114-117页 |
| 5.4 本章小结 | 第117-118页 |
| 参考文献 | 第118-121页 |
| 第六章 基于压力驱动的方法比较不同涂层材料抑制蛋白质吸附的能力 | 第121-131页 |
| 6.1 引言 | 第121-122页 |
| 6.2 实验部分 | 第122-123页 |
| 6.2.1 仪器与试剂 | 第122-123页 |
| 6.2.2 背景电解质及蛋白质样品的配制 | 第123页 |
| 6.2.3 压力驱动的蛋白质吸附评价实验 | 第123页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第123-128页 |
| 6.3.1 裸露毛细管中碱性蛋白质的吸附观测 | 第123-124页 |
| 6.3.2 商品化涂层材料及不同取代度QC抗蛋白质吸附能力的比较 | 第124-126页 |
| 6.3.3 不同金含量QC-Au NPs的抗蛋白质吸附能力 | 第126-127页 |
| 6.3.4 不同浓度HMQC的抗蛋白质吸附能力 | 第127-128页 |
| 6.4 本章小结 | 第128-129页 |
| 参考文献 | 第129-131页 |
| 附录 攻读博士学位期间发表和待发表的论文 | 第131-132页 |
| 致谢 | 第132页 |
