| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一篇 利用四倍化的六倍体DH群体构建小麦遗传图谱 | 第12-29页 |
| 1. 文献综述 | 第12-17页 |
| 1.1 遗传图谱的构建 | 第12-15页 |
| 1.1.1 亲本选择 | 第12页 |
| 1.1.2 作图群体的选择与类型 | 第12-13页 |
| 1.1.3 遗传标记的选择 | 第13-15页 |
| 1.1.4 构建连锁群 | 第15页 |
| 1.2 小麦遗传图谱的研究 | 第15-16页 |
| 1.3 本研究目的 | 第16-17页 |
| 2. 材料与方法 | 第17-19页 |
| 2.1 实验材料 | 第17-18页 |
| 2.2 田间试验及调查 | 第18页 |
| 2.3 实验方法 | 第18-19页 |
| 2.3.1 基因组DNA的提取 | 第18页 |
| 2.3.2 SSR、ISBP和DArT分析 | 第18-19页 |
| 2.3.3 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳及银染 | 第19页 |
| 2.3.4 SDS-PAGE分析 | 第19页 |
| 2.3.5 遗传图谱的建立 | 第19页 |
| 2.3.6 QTL分析 | 第19页 |
| 3 结果与分析 | 第19-27页 |
| 3.1 遗传图谱的构建和QTL分析 | 第19-23页 |
| 3.1.1 遗传图谱的构建 | 第19-23页 |
| 3.1.2 QTL分析 | 第23页 |
| 3.2 偏分离分析 | 第23页 |
| 3.3 图谱比较 | 第23-27页 |
| 4 讨论 | 第27-29页 |
| 第二篇 组蛋白甲基化转移酶SDG8及开花基因FT在功能上协同调控植株形态及开花时间的研究 | 第29-87页 |
| 1. 文献综述 | 第29-45页 |
| 1.1 拟南芥 | 第29-30页 |
| 1.2 拟南芥等高等植物的开花调控 | 第30-36页 |
| 1.2.1 光周期途径 | 第31-33页 |
| 1.2.2 春化途径 | 第33-34页 |
| 1.2.3 自主途径 | 第34-35页 |
| 1.2.4 赤霉素途径 | 第35-36页 |
| 1.3 拟南芥等高等植株的分枝发育 | 第36-40页 |
| 1.3.1 分枝类型 | 第37页 |
| 1.3.2 分枝发育理化模式 | 第37-38页 |
| 1.3.3 分枝调控的相关基因 | 第38-40页 |
| 1.4 SDG8基因与表观遗传学 | 第40-41页 |
| 1.5 图位克隆技术 | 第41-43页 |
| 1.5.1 图位克隆的分子标记 | 第42页 |
| 1.5.2 图位克隆的一般过程 | 第42-43页 |
| 1.6 简单、高效的Gateway(?)重组克隆系统 | 第43-44页 |
| 1.6.1 Gateway(?)重组克隆系统的原理 | 第43页 |
| 1.6.2 Gateway(?)重组克隆系统的优点 | 第43-44页 |
| 1.7 本实验的目的和意义 | 第44-45页 |
| 2 作图群体的构建 | 第45-51页 |
| 2.1 材料与方法 | 第45-48页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第45-46页 |
| 2.1.2 拟南芥的培养 | 第46页 |
| 2.1.3 杂交 | 第46-47页 |
| 2.1.4 双突变体的筛选 | 第47-48页 |
| 2.1.5 作图群体的构建 | 第48页 |
| 2.2 实验结果 | 第48-50页 |
| 2.2.1 突变体的形态特征 | 第48-49页 |
| 2.2.2 野生型与双突变体开花表型的比较 | 第49页 |
| 2.2.3 突变体筛选标准 | 第49-50页 |
| 2.2.4 F_2作图群体的构建 | 第50页 |
| 2.3 讨论 | 第50-51页 |
| 3 拟南芥开花基因FT的定位 | 第51-57页 |
| 3.1 材料与方法 | 第51-54页 |
| 3.1.1 供试材料 | 第51-52页 |
| 3.1.2 方法 | 第52-54页 |
| 3.1.2.1 DNA提取(CTAB法) | 第52-53页 |
| 3.1.2.2 图位克隆的方法 | 第53页 |
| 3.1.2.3 利用分子标记进行定位 | 第53-54页 |
| 3.1.2.4 F_3代植株表型鉴定 | 第54页 |
| 3.2 实验结果 | 第54-56页 |
| 3.2.1 突变基因的初步定位 | 第54页 |
| 3.2.2 突变基因的精细定位 | 第54-56页 |
| 3.2.3 F_3代植株表型的观察 | 第56页 |
| 3.3 讨论 | 第56-57页 |
| 4 FT基因的克隆及互补回复 | 第57-67页 |
| 4.1 材料与方法 | 第57-64页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第57页 |
| 4.1.2 主要载体、菌株和酶 | 第57页 |
| 4.1.3 实验方法 | 第57-64页 |
| 4.2 实验结果 | 第64-66页 |
| 4.2.1 目的片段的扩增及基因组测序 | 第64-65页 |
| 4.2.2 cDNA测序分析 | 第65页 |
| 4.2.3 回复验证 | 第65-66页 |
| 4.3 讨论 | 第66-67页 |
| 5 SDG8及FT协同调控植株形态及开花时间 | 第67-87页 |
| 5.1 材料和方法 | 第67-74页 |
| 5.1.1 材料及试剂 | 第67-68页 |
| 5.1.2 实时定量PCR | 第68-69页 |
| 5.1.3 双分子荧光互补实验 | 第69-70页 |
| 5.1.4 酵母双杂交试验 | 第70-72页 |
| 5.1.5 定点诱变 | 第72-73页 |
| 5.1.6 石蜡切片 | 第73页 |
| 5.1.7 GUS染色 | 第73-74页 |
| 5.2 实验结果 | 第74-83页 |
| 5.2.1 ft-11抑制了sdg8-2的早开花表型 | 第74-75页 |
| 5.2.2 单个氨基酸位点的突变会影响FT的功能 | 第75-78页 |
| 5.2.3 ft-11抑制了sdg8-2的多分枝表型 | 第78-82页 |
| 5.2.4 ft-11没有影响sdg8-2中种子贮藏蛋白的表达 | 第82-83页 |
| 5.3 讨论 | 第83-87页 |
| 参考文献 | 第87-102页 |
| 致谢 | 第102-104页 |
| 在读期间发表的文章 | 第104页 |
