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塞来昔布和氨芬酸对血管内皮生长因子诱导下恒河猴视网膜脉络膜血管内皮细胞作用的比较及机制的研究

中文摘要第4-9页
Abstract第9-11页
缩略语第15-16页
前言第16-19页
    研究现状、成果第16-17页
    研究目的、方法第17-18页
    本研究主要内容第18-19页
对象和方法第19-29页
    1 实验对象第19页
    2 实验材料第19-22页
        2.1 主要试剂第19-20页
        2.2 主要仪器第20页
        2.3 主要试剂的配置第20-22页
    3 实验方法第22-29页
        3.1 细胞培养第22-23页
            3.1.1 细胞复苏第22-23页
            3.1.2 细胞传代第23页
            3.1.3 细胞悬液的配置第23页
        3.2 MTT法检测Celecoxib及Amfenac对RF/6A细胞的抑制率及IC 第23页
            3.2.1 实验方法第23页
            3.2.2 实验分组第23页
        3.3 VEGF_(165)诱导细胞增殖第23-24页
        3.4 细胞划痕模型的建立第24页
        3.5 流式细胞仪测定细胞停留分裂周期比例第24页
        3.6 药物对VEGF_(165)诱导下细胞分泌PGE2第24页
        3.7 RT-PCR法测定药物作用VEGF_(165)诱导下的细胞表达各因子的测定第24-29页
实验结果第29-47页
    1 Celecoxib不同浓度及时间作用下对RF/6A细胞的抑制及IG_(50)测定第29-30页
        1.1 Celecoxib不同药物浓度作用下不同时间点的吸光度A值统计学分析第29页
        1.2 Celecoxib对细胞生长抑制率及IC_(50)的测定第29-30页
    2 Amfenac不同浓度及时间作用下对RF/6A细胞的抑制及IC_(50)测定第30-32页
        2.1 吸光度A值及统计学分析第30-31页
        2.2 Amfenac对细胞生长的抑制率及IC_(50)的测定第31-32页
    3 Celecoxib与Amfenac 48h抑制率的比较第32页
    4 4 8h Celecoxib、Amfenac及TA对VEGF_(165)诱导RF/6A细胞的吸光度A值及细胞抑制率比较第32-34页
    5 细胞划痕修复实验数据及统计分析第34-35页
        5.1 细胞划痕修复实验图第34页
        5.2 细胞迁移像素差异统计学分析第34-35页
    6 流式细胞仪测量细胞周期第35-39页
        6.1 不同组细胞周期图第35-37页
        6.2 Celecoxib,Amfenac及TA对RF/6A细胞各周期统计学分析第37-38页
        6.3 Celecoxib、Amfenac及TA对VEGF_(165)诱导RF/6A细胞各周期的统计分析第38-39页
    7 各组PGE_2分泌量及统计学分析第39-41页
    8 RT-PCR法测定药物作用于VEGF_(165)诱导下的细胞表达各因子mRNA含量及统计学分析第41-47页
        8.1 RF/6A细胞表达mRNA含量计算第41-42页
        8.2 各实验组RF/6A细胞表达各因子mRNA相对表达量统计学分析第42-47页
讨论第47-56页
    1 Celecoxib、Amfenac及TA抑制RF/6A细胞的研究背景及对象的选择第47页
    2 Celecoxib、Amfenac及TA对正常RF/6A细胞增殖的抑制作用第47-48页
    3 VEGF_(165)对NV形成的作用及三种药物对VEGF_(165)诱导RF/6A细胞增殖及细胞周期的抑制作用比较第48-49页
    4 三种药物对VEGF_(165)诱导RF/6A细胞迁移能力的抑制作用比较及机制的研究第49-50页
    5 三种药物对VEGF_(165 )诱导RF/6A细胞表达MMPs-TIMPs系统及COX-2-PGE2系统的作用第50-54页
    6 三种药物对VEGF_(16 5)诱导RF/6 A细胞KDR表达的作用比较第54-56页
结论第56-57页
参考文献第57-65页
发表论文和参加科研情况说明第65-66页
综述第66-76页
    综述参考文献第71-76页
致谢第76页

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