| 摘要 | 第5-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 目录 | 第12-14页 |
| 符号及中英文缩写对照名词表 | 第14-15页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 第一章 组织因子在人胚胎干细胞分化过程中的表达变化 | 第18-48页 |
| 1.1 研究背景 | 第18-19页 |
| 1.2. 材料和方法 | 第19-38页 |
| 1.2.1 研究对象 | 第19-20页 |
| 1.2.2 主要实验仪器及设备 | 第20页 |
| 1.2.3 主要实验试剂及耗材 | 第20-23页 |
| 1.2.4 主要试剂配置 | 第23-27页 |
| 1.2.5 实验方法 | 第27-38页 |
| 1.2.6 统计学分析 | 第38页 |
| 1.3 实验结果 | 第38-40页 |
| 1.3.1 hESCs的培养及传代 | 第38-39页 |
| 1.3.2 hESCs诱导分化为造血干细胞,进一步分化为血细胞 | 第39页 |
| 1.3.3 hESCs诱导分化为滋养层细胞 | 第39-40页 |
| 1.3.4 hESCs向造血及滋养层细胞分化过程中TF的表达水平 | 第40页 |
| 1.4 讨论 | 第40-42页 |
| 1.5 小结 | 第42-43页 |
| 附图 | 第43-48页 |
| 第二章 MIRNA在组织因子表达过程中的调控作用 | 第48-73页 |
| 2.1 研究背景 | 第48-49页 |
| 2.2 材料和方法 | 第49-61页 |
| 2.2.1 研究对象 | 第49-50页 |
| 2.2.2 主要实验仪器及设备(详见第一章) | 第50页 |
| 2.2.3 主要实验试剂及耗材 | 第50-52页 |
| 2.2.4 主要试剂配置(详见第一章) | 第52页 |
| 2.2.5 实验方法 | 第52-61页 |
| 2.2.6 统计学分析 | 第61页 |
| 2.3 实验结果 | 第61-65页 |
| 2.3.1 miRNA的表达谱检测 | 第61页 |
| 2.3.2 生物信息学分析 | 第61-63页 |
| 2.3.3 实时定量PCR分析 | 第63-64页 |
| 2.3.4 双荧光素酶报告基因 | 第64页 |
| 2.3.5 检测miRNA的mimicsTF表达水平的影响 | 第64-65页 |
| 2.3.6 检测miR-20b对TF表达水平的作用 | 第65页 |
| 2.4 讨论 | 第65-66页 |
| 2.5 小结 | 第66-67页 |
| 附图 | 第67-73页 |
| 第三章 ERK1/2在组织因子表达过程中所起的调控作用 | 第73-87页 |
| 3.1 研究背景 | 第73-74页 |
| 3.2. 材料和方法 | 第74-79页 |
| 3.2.1 研究对象 | 第74-75页 |
| 3.2.2 主要实验仪器及设备(详见第一章) | 第75页 |
| 3.2.3 主要实验试剂及耗材 | 第75-77页 |
| 3.2.4 主要试剂配置(详见第一章) | 第77页 |
| 3.2.5 实验方法 | 第77-79页 |
| 3.2.6 统计学分析 | 第79页 |
| 3.3 实验结果 | 第79-80页 |
| 3.3.1 检测Erk1/2和Akt表达水平 | 第79页 |
| 3.3.2 hESCs向造血及滋养层细胞分化过程中TF的表达水平 | 第79-80页 |
| 3.3.3 实时定量PCR检测U0126和miR-20b inhibitor对TF表达水平的作用 | 第80页 |
| 3.4 讨论 | 第80-82页 |
| 3.5 小结 | 第82-83页 |
| 附图 | 第83-87页 |
| 结论 | 第87-88页 |
| 参考文献 | 第88-97页 |
| 综述 | 第97-107页 |
| 参考文献 | 第103-107页 |
| 攻读博士学位期间的主要研究成果 | 第107-108页 |
| 致谢 | 第108页 |
