摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-10页 |
符号说明 | 第11-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-29页 |
引言 | 第12页 |
1 逆境胁迫与植物体内活性氧的积累 | 第12-15页 |
1.1 逆境胁迫类型 | 第12-13页 |
1.2 活性氧对植物的影响 | 第13-14页 |
1.3 植物体内的活性氧清除系统 | 第14-15页 |
2 甲硫氨酸亚砜还原酶(MSR) | 第15-23页 |
2.1 蛋白质中Met的氧化与还原 | 第15-16页 |
2.2 MSR的类型及亚群 | 第16-19页 |
2.3 MSR的催化机制 | 第19-21页 |
2.4 植物中的MSR | 第21-23页 |
3 MSR的生理作用 | 第23-26页 |
3.1 MSR在动物中的病理生理作用 | 第23-24页 |
3.2 MSR在植物中的生理作用 | 第24-26页 |
4 对MSR的研究展望 | 第26-27页 |
5 本论文的目的、意义和主要研究内容 | 第27-29页 |
第二章 小麦MSR基因家族的生物信息学鉴定 | 第29-40页 |
1 材料与方法 | 第29页 |
1.1 小麦MSR同源基因的搜索 | 第29页 |
1.2 蛋白质性质的分析 | 第29页 |
2 结果 | 第29-37页 |
2.1 小麦MSR基因家族的组成 | 第29-31页 |
2.2 TaMSR的序列分析 | 第31-35页 |
2.3 蛋白保守结构域及三级结构预测 | 第35-36页 |
2.4 小麦中MSR的基本特性和亚细胞定位预测 | 第36-37页 |
3 讨论 | 第37-40页 |
第三章 小麦MSR基因家族的功能分析 | 第40-64页 |
1 实验材料和试剂 | 第40-42页 |
1.1 植物材料 | 第40页 |
1.2 菌株和载体材料 | 第40页 |
1.3 成品试剂及药品 | 第40-41页 |
1.4 培养基和溶液 | 第41-42页 |
2 实验方法 | 第42-49页 |
2.1 盐、旱胁迫下TaMSRB2.1和TaMSRB3.1的表达模式分析 | 第42-44页 |
2.2 TaMSRB2.1、TaMSRB3.1的组织表达模式分析 | 第44页 |
2.3 TaMSRB2.1、TaMSRB3.1的克隆 | 第44-45页 |
2.4 亚细胞定位研究分析 | 第45-47页 |
2.5 转基因拟南芥的获取及研究 | 第47-49页 |
3 结果与分析 | 第49-60页 |
3.1 TaMSRB2.1、TaMSRB3.1的表达模式分析 | 第49-50页 |
3.2 TaMSRB2.1、TaMSRB3.1基因的克隆 | 第50-52页 |
3.3 TaMSRB2.1、TaMSRB3.1的亚细胞定位研究 | 第52-53页 |
3.4 拟南芥过表达植株的获得 | 第53-56页 |
3.5 拟南芥过表达株系表型分析 | 第56-60页 |
4 讨论 | 第60-64页 |
参考文献 | 第64-70页 |
致谢 | 第70-71页 |
附件 | 第71页 |