| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 第1章 绪论 | 第15-26页 |
| 1.1 灵芝简介 | 第15页 |
| 1.2 灵芝多糖 | 第15-16页 |
| 1.3 灵芝多糖的研究进展 | 第16-24页 |
| 1.3.1 灵芝多糖的提取 | 第16-18页 |
| 1.3.1.1 传统热水浸提法 | 第16页 |
| 1.3.1.2 超声辅助提取法 | 第16-17页 |
| 1.3.1.3 酶提法 | 第17页 |
| 1.3.1.4 微波提取法 | 第17页 |
| 1.3.1.5 其他提取方法 | 第17-18页 |
| 1.3.2 灵芝多糖的分离纯化 | 第18-19页 |
| 1.3.2.1 灵芝多糖脱蛋白 | 第18-19页 |
| 1.3.2.2 灵芝多糖的脱色 | 第19页 |
| 1.3.3 灵芝多糖的理化表征 | 第19-22页 |
| 1.3.3.1 灵芝多糖分子量的检测 | 第19-20页 |
| 1.3.3.2 灵芝多糖的组成研究 | 第20页 |
| 1.3.3.4 灵芝多糖的结构分析 | 第20-22页 |
| 1.3.4 灵芝多糖的生物活性研究 | 第22-24页 |
| 1.3.4.1 灵芝多糖的抗肿瘤及免疫调节作用 | 第22-23页 |
| 1.3.4.2 灵芝多糖的抗氧化作用 | 第23页 |
| 1.3.4.3 灵芝多糖的抗辐射作用 | 第23页 |
| 1.3.4.4 灵芝多糖的其他药理作用 | 第23-24页 |
| 1.4 本课题的立题背景和研究内容 | 第24-26页 |
| 1.4.1 立题背景 | 第24页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第24-26页 |
| 第2章 超声辅助水提法（UAE）和传统热水浸提法(HWE)提取灵芝多糖条件的优化研究 | 第26-38页 |
| 2.1 实验仪器与试剂 | 第26页 |
| 2.1.1 原料 | 第26页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第26页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第26页 |
| 2.2 方法 | 第26-28页 |
| 2.2.1 灵芝多糖含量的测定 | 第26-27页 |
| 2.2.1.1 测定方法 | 第26页 |
| 2.2.1.2 葡萄糖标准曲线的绘制 | 第26-27页 |
| 2.2.1.3 多糖得率计算公式 | 第27页 |
| 2.2.2 灵芝多糖提取工艺流程 | 第27页 |
| 2.2.3 提取灵芝多糖的单因素条件优化 | 第27-28页 |
| 2.2.4 正交试验设计 | 第28页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第28-37页 |
| 2.3.1 葡萄糖标准曲线 | 第28-29页 |
| 2.3.2 传统热水浸提法提取灵芝多糖单因素实验分析 | 第29-31页 |
| 2.3.2.1 提取温度对灵芝多糖得率的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.2.2 提取时间对灵芝多糖得率的影响 | 第30页 |
| 2.3.2.3 液料比对灵芝多糖得率的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.3 传统热水浸提法正交试验结果 | 第31-32页 |
| 2.3.4 超声波辅助水提法提取灵芝多糖单因素实验分析 | 第32-35页 |
| 2.3.4.1 提取温度对灵芝多糖得率的影响 | 第32-33页 |
| 2.3.4.2 提取时间对灵芝多糖得率的影响 | 第33-34页 |
| 2.3.4.3 液料比对灵芝多糖得率的影响 | 第34-35页 |
| 2.3.5 超声波辅助水提法正交试验结果 | 第35-37页 |
| 2.4 小结 | 第37-38页 |
| 第3章 超声辅助酶法（UAEE）和酶提法(EE)提取灵芝多糖条件的优化研究 | 第38-52页 |
| 3.1 实验仪器与试剂 | 第38页 |
| 3.1.1 原料 | 第38页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第38页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第38页 |
| 3.2 方法 | 第38-41页 |
| 3.2.1 灵芝多糖含量的测定 | 第38-39页 |
| 3.2.1.1 测定方法 | 第38页 |
| 3.2.1.2 葡萄糖标准曲线的绘制 | 第38页 |
| 3.2.1.3 多糖得率计算公式 | 第38-39页 |
| 3.2.2 超声辅助酶法提取灵芝多糖工艺流程 | 第39页 |
| 3.2.3 超声辅助酶法提取灵芝多糖的单因素实验设计 | 第39页 |
| 3.2.4 超声辅助酶法提取灵芝多糖的响应面法（RSM）优化实验 | 第39-40页 |
| 3.2.5 实验数据分析 | 第40页 |
| 3.2.6 最优实验条件的确定与验证 | 第40-41页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第41-51页 |
| 3.3.1 酶制剂的选择 | 第41页 |
| 3.3.2 超声辅助酶法提取灵芝多糖的单因素研究 | 第41-44页 |
| 3.3.2.1 pH值对多糖提取率的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.2.2 液料比对多糖提取率的影响 | 第42页 |
| 3.3.2.3 温度对多糖提取率的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.2.4 时间对多糖提取率的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.3 模型预测及统计分析 | 第44-46页 |
| 3.3.4 响应面图与等高线图分析 | 第46-51页 |
| 3.3.5 提取条件确定及模型验证 | 第51页 |
| 3.4 小结 | 第51-52页 |
| 第4章 灵芝多糖分离纯化研究 | 第52-57页 |
| 4.1 实验仪器与试剂 | 第53页 |
| 4.1.1 原料 | 第53页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第53页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第53页 |
| 4.2 方法 | 第53-54页 |
| 4.2.1 灵芝多糖分离纯化流程 | 第53页 |
| 4.2.2 Sevag法除蛋白 | 第53页 |
| 4.2.3 活性炭脱色 | 第53-54页 |
| 4.2.4 DEAE-52纤维素离子交换柱色谱 | 第54页 |
| 4.2.5 Sephadex G-100葡聚糖凝胶层析柱色谱 | 第54页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第54-56页 |
| 4.3.1 DEAE-52纤维素色谱法初步分离 | 第54-55页 |
| 4.3.2 Sephadex G-100葡聚糖凝胶层析法纯化 | 第55-56页 |
| 4.4 小结 | 第56-57页 |
| 第5章 超声辅助水提法和传统热水浸提法对灵芝多糖理化表征的影响 | 第57-68页 |
| 5.1 实验仪器与试剂 | 第57页 |
| 5.1.1 原料 | 第57页 |
| 5.1.2 主要仪器 | 第57页 |
| 5.1.3 主要试剂 | 第57页 |
| 5.2 方法 | 第57-60页 |
| 5.2.1 高效凝胶渗透色谱（HPGPC）测定多糖样品分子量 | 第57-58页 |
| 5.2.1.1 色谱条件 | 第57页 |
| 5.2.1.2 多糖样品相对分子质量测定 | 第57-58页 |
| 5.2.2 高效液相色谱法（HPLC）分析多糖样品单糖组成 | 第58页 |
| 5.2.2.1 多糖样品水解 | 第58页 |
| 5.2.2.2 PMP衍生化 | 第58页 |
| 5.2.2.3 高效液相色谱分析 | 第58页 |
| 5.2.3 紫外光谱分析 | 第58-59页 |
| 5.2.4 多糖的红外光谱（FTIR）分析 | 第59页 |
| 5.2.5 高碘酸氧化实验 | 第59页 |
| 5.2.6 刚果红实验 | 第59-60页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第60-67页 |
| 5.3.1 多糖分子量测定结果 | 第60-61页 |
| 5.3.2 多糖的单糖组成分析 | 第61-64页 |
| 5.3.3 多糖结构表征 | 第64页 |
| 5.3.4 多糖高碘酸氧化 | 第64-66页 |
| 5.3.5 三股螺旋结构分析 | 第66-67页 |
| 5.4 小结 | 第67-68页 |
| 第6章 超声辅助水提法和传统热水浸提法对灵芝多糖体外抗氧化活性的影响 | 第68-73页 |
| 6.1 实验仪器与试剂 | 第68页 |
| 6.1.1 原料 | 第68页 |
| 6.1.2 主要仪器 | 第68页 |
| 6.1.3 主要试剂 | 第68页 |
| 6.2 方法 | 第68-69页 |
| 6.2.1 清除DPPH自由基活性测定 | 第68页 |
| 6.2.2 还原力测定 | 第68-69页 |
| 6.2.3 羟基自由基清除能力测定 | 第69页 |
| 6.2.4 数据分析 | 第69页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第69-72页 |
| 6.3.1 清除DPPH自由基活性测定 | 第69-70页 |
| 6.3.2 还原力测定 | 第70页 |
| 6.3.3 羟基自由基清除能力测定 | 第70-72页 |
| 6.4 小结 | 第72-73页 |
| 第7章 结论与展望 | 第73-75页 |
| 7.1 主要结论 | 第73-74页 |
| 7.2 工作展望 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
