缩略词表 | 第6-8页 |
摘要 | 第8-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
前言 | 第14-17页 |
第一章 薯蓣皂苷致肝毒性及其与AhR/CYP1A的关系 | 第17-29页 |
第一节 薯蓣皂苷的肝细胞毒作用 | 第17-23页 |
1 材料 | 第17-18页 |
1.1 药物与试剂 | 第17页 |
1.2 仪器 | 第17-18页 |
1.3 细胞系与细胞培养 | 第18页 |
2 方法 | 第18页 |
2.1 细胞活力及LDH释放检测 | 第18页 |
2.2 细胞形态观察 | 第18页 |
2.3 ROS检测 | 第18页 |
2.4 统计学分析 | 第18页 |
3 结果 | 第18-22页 |
3.1 薯蓣皂苷对HepG2细胞活力的影响 | 第18-19页 |
3.2 薯蓣皂苷对HepG2细胞LDH释放的影响 | 第19-20页 |
3.3 薯蓣皂苷作用于HepG2细胞后的形态学观测 | 第20-21页 |
3.4 薯蓣皂苷对Hep G2细胞ROS水平的影响 | 第21-22页 |
4 讨论 | 第22-23页 |
第二节 薯蓣皂苷毒性机制研究 | 第23-28页 |
1 材料 | 第23页 |
1.1 药物与试剂 | 第23页 |
1.2 仪器 | 第23页 |
1.3 细胞系与细胞培养 | 第23页 |
2 方法 | 第23-25页 |
2.1 瞬时共转染荧光素酶报告基因技术 | 第23-24页 |
2.2 RNA提取和实时定量PCR | 第24页 |
2.3 蛋白免疫印迹 | 第24-25页 |
2.4 统计学分析 | 第25页 |
3 结果 | 第25-27页 |
3.1 薯蓣皂苷对CYP1A1荧光素酶报告基因的影响 | 第25页 |
3.2 薯蓣皂苷对Hep G2细胞中AhR及CYP1A mRNA的表达的影响 | 第25-26页 |
3.3 薯蓣皂苷对HepG2细胞中CYP1A1蛋白表达的影响 | 第26-27页 |
4 讨论 | 第27-28页 |
小结 | 第28-29页 |
第二章 人参皂苷Rb1通过AhR拮抗DOX诱导的心肌凋亡及其机制研究 | 第29-48页 |
第一节 人参皂苷Rb1对DOX诱导心肌凋亡的影响 | 第30-38页 |
1 材料 | 第30页 |
1.1 药物与试剂 | 第30页 |
1.2 仪器 | 第30页 |
1.3 细胞系与细胞培养 | 第30页 |
2 方法 | 第30-32页 |
2.1 细胞活力检测 | 第30-31页 |
2.2 DNA碎片检测 | 第31页 |
2.3 Hoechst 33258染色 | 第31-32页 |
2.4 Caspase- 3/7, 8 , 9 酶活性的测定 | 第32页 |
2.5 蛋白免疫印迹 | 第32页 |
2.6 统计学分析 | 第32页 |
3 结果 | 第32-37页 |
3.1 人参皂苷Rb1对DOX作用后H9C2细胞活力的影响 | 第32-33页 |
3.2 人参皂苷Rb1对DOX作用后H9C2细胞质内DNA核小体片段的影响 | 第33-34页 |
3.3 人参皂苷 Rb1 对 DOX 作用后 H9C2 细胞形态的影响 | 第34-35页 |
3.4 人参皂苷Rb1对DOX诱导凋亡相关基因的下调作用 | 第35-37页 |
4 讨论 | 第37-38页 |
第二节 人参皂苷Rb1减毒作用机制研究 | 第38-47页 |
1 材料 | 第38-39页 |
1.1 药物与试剂 | 第38页 |
1.2 仪器 | 第38-39页 |
1.3 细胞系与细胞培养 | 第39页 |
2 方法 | 第39-41页 |
2.1 瞬时共转染荧光素酶报告基因技术 | 第39页 |
2.2 RNA提取和实时定量PCR | 第39-40页 |
2.3 蛋白免疫印迹 | 第40页 |
2.4 siRNA转染 | 第40-41页 |
2.5 统计学分析 | 第41页 |
3 结果 | 第41-46页 |
3.1 人参皂苷Rb1及DOX对CYP1A1荧光素酶报告基因的影响 | 第41-42页 |
3.2 人参皂苷Rb1对DOX诱导AhR相关基因的下调作用 | 第42-44页 |
3.3 AhR在人参皂苷Rb1抑制DOX诱导心肌凋亡中的作用 | 第44-46页 |
4 讨论 | 第46-47页 |
小结 | 第47-48页 |
全文总结 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-55页 |
个人简历 | 第55-56页 |
致谢 | 第56页 |