| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 符号说明 | 第11-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-39页 |
| 1.1 引言 | 第13-14页 |
| 1.2 奶牛RFM的研究进展 | 第14-23页 |
| 1.2.1 解剖学特征 | 第14-19页 |
| 1.2.2 胎儿-母体结构单元免疫学特征 | 第19页 |
| 1.2.3 分娩时奶牛胎盘的分离 | 第19-20页 |
| 1.2.4 激素对RFM的影响 | 第20-21页 |
| 1.2.5 奶牛RFM的病因 | 第21-23页 |
| 1.3 miRNA：基因组学、生物起源、机制、表达模式、生物学功能和研究方法 | 第23-35页 |
| 1.3.1 miRNA的基因组学 | 第24-26页 |
| 1.3.2 miRNA的生物起源 | 第26-28页 |
| 1.3.3 miRNA的作用机制 | 第28-31页 |
| 1.3.4 miRNA的生物学功能 | 第31-32页 |
| 1.3.5 miRNA的研究方法 | 第32-35页 |
| 1.4 奶牛RFM与miRNA | 第35-39页 |
| 1.4.1 奶牛RFM与miRNA高通量测序 | 第35-36页 |
| 1.4.2 VEGFA的生物学功能 | 第36-37页 |
| 1.4.3 miRNA-185调控VEGFA影响奶牛RFM的假说 | 第37-39页 |
| 第二章 RFM奶牛母体胎盘VEGFA表达分析及定位 | 第39-49页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第39-43页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第39-41页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第41-43页 |
| 2.2 结果与分析 | 第43-47页 |
| 2.2.1 总RNA提取与浓度测定结果 | 第43-44页 |
| 2.2.2 总蛋白提取与浓度测定结果 | 第44-45页 |
| 2.2.3 奶牛母体胎盘组织中VEGFA的表达水平 | 第45页 |
| 2.2.4 FISH检测结果 | 第45-47页 |
| 2.3 讨论 | 第47-48页 |
| 2.3.1 VEGFA与RFM的关系 | 第47-48页 |
| 2.3.2 奶牛UCE细胞与RFM的关系 | 第48页 |
| 2.4 小结 | 第48-49页 |
| 第三章 miRNA-185对VEGFA信号通路关键分子调控的研究 | 第49-65页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第49-54页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第49-51页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第51-54页 |
| 3.2 结果与分析 | 第54-61页 |
| 3.2.1 奶牛UCE原代细胞培养结果 | 第54-56页 |
| 3.2.2 奶牛UCE原代细胞鉴定结果 | 第56页 |
| 3.2.3 双荧光素酶报告基因检测结果 | 第56-57页 |
| 3.2.4 miRNA-185mimics/inhibitor转染结果 | 第57页 |
| 3.2.5 miRNA-185对VEGFA的调控结果 | 第57-58页 |
| 3.2.6 miRNA-185对VEGFA信号通路关键分子的调控结果 | 第58-60页 |
| 3.2.7 不同处理对ARA浓度的影响 | 第60-61页 |
| 3.3 讨论 | 第61-63页 |
| 3.3.1 实验目标细胞模型的选择及构建 | 第61-62页 |
| 3.3.2 miRNA-185对VEGFA的调控 | 第62页 |
| 3.3.3 miRNA-185对VEGFA信号通路的调控 | 第62-63页 |
| 3.4 小结 | 第63-65页 |
| 第四章 RFM奶牛体内VEGFA信号通路关键分子的表达变化研究 | 第65-71页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第65-66页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第65-66页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第66页 |
| 4.2 结果与分析 | 第66-68页 |
| 4.2.1 RFM和健康组奶牛血清中VEGFA和ARA表达水平 | 第66-67页 |
| 4.2.2 RFM和健康组奶牛肉阜组织中VEGFA信号通路关键分子的表达水平 | 第67-68页 |
| 4.3 讨论 | 第68-70页 |
| 4.3.1 RFM奶牛体内变化 | 第68-69页 |
| 4.3.2 RFM发病机制探讨 | 第69-70页 |
| 4.4 小结 | 第70-71页 |
| 第五章 全文总结 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-89页 |
| 致谢 | 第89-91页 |
| 个人简历 | 第91-92页 |
