摘要 | 第5-8页 |
Abstract | 第8-11页 |
第1章 引言 | 第17-43页 |
1.1 土壤中的镉、铅污染 | 第17-21页 |
1.1.1 土壤中镉、铅的来源 | 第17-19页 |
1.1.2 土壤中镉、铅的危害 | 第19-20页 |
1.1.3 土壤中镉、铅的污染现状 | 第20-21页 |
1.2 重金属污染土壤的植物修复 | 第21-23页 |
1.2.1 植物提取 | 第21-22页 |
1.2.2 植物固化 | 第22-23页 |
1.3 根系分泌物及其在重金属污染土壤植物修复中的作用 | 第23-29页 |
1.3.1 植物根系分泌物的种类和组成 | 第23-24页 |
1.3.2 影响植物根系分泌的因素 | 第24-27页 |
1.3.3 根系分泌物在重金属污染土壤植物修复中的作用 | 第27-29页 |
1.4 代谢组学及其在环境领域中的应用 | 第29-39页 |
1.4.1 代谢组学的研究方法 | 第30-37页 |
1.4.2 代谢组学在环境领域中的应用 | 第37-39页 |
1.5 本研究的意义及研究内容 | 第39-40页 |
1.5.1 研究目的及意义 | 第39-40页 |
1.5.2 研究内容 | 第40页 |
1.6 研究的特色与创新点 | 第40-43页 |
第2章 基于GC/MS的根系分泌物代谢组学方法研究 | 第43-59页 |
2.1 实验仪器与材料 | 第44页 |
2.1.1 仪器 | 第44页 |
2.1.2 试剂 | 第44页 |
2.1.3 植物材料 | 第44页 |
2.2 实验方法 | 第44-46页 |
2.2.1 植物培养 | 第44-45页 |
2.2.2 植物根系分泌物的收集 | 第45页 |
2.2.3 植物根系分泌物的预处理 | 第45-46页 |
2.2.4 植物根系分泌物的测定 | 第46页 |
2.3 实验结果与分析 | 第46-58页 |
2.3.1 根系分泌物提取条件的优化 | 第46-48页 |
2.3.2 根系分泌物衍生化条件的优化 | 第48-49页 |
2.3.3 色谱质谱条件的优化 | 第49-51页 |
2.3.4 方法学考察 | 第51-52页 |
2.3.5 数据提取方法的选择 | 第52-58页 |
2.4 小结 | 第58-59页 |
第3章 镉胁迫下东南景天根系分泌物的代谢组学研究 | 第59-119页 |
3.1 实验仪器与材料 | 第60-61页 |
3.1.1 仪器 | 第60页 |
3.1.2 试剂 | 第60页 |
3.1.3 植物材料 | 第60-61页 |
3.2 实验方法 | 第61-64页 |
3.2.1 植物培养 | 第61-62页 |
3.2.2 植物根系分泌物的收集 | 第62页 |
3.2.3 植物体内镉含量的测定 | 第62页 |
3.2.4 植物根系分泌物的预处理 | 第62页 |
3.2.5 植物根系分泌物的测定 | 第62-63页 |
3.2.6 数据处理 | 第63-64页 |
3.3 镉胁迫下两种生态型东南景天根系分泌物的代谢组学研究 | 第64-79页 |
3.3.1 植物生长与镉积累 | 第64-66页 |
3.3.2 根系分泌物的GC/MS分析 | 第66-71页 |
3.3.3 数据质量评价 | 第71-72页 |
3.3.4 模式识别分析 | 第72-75页 |
3.3.5 潜在生物标志物的识别 | 第75-77页 |
3.3.6 潜在生物标志物的生物学意义 | 第77-79页 |
3.4 不同镉暴露浓度下超富集生态型东南景天根系分泌物的代谢组学研究 | 第79-96页 |
3.4.1 植物生长与镉积累 | 第79-82页 |
3.4.2 根系分泌物的GC/MS分析 | 第82-87页 |
3.4.3 数据质量评价 | 第87-88页 |
3.4.4 模式识别分析 | 第88-90页 |
3.4.5 潜在生物标志物的识别 | 第90-93页 |
3.4.6 潜在生物标志物的生物学意义 | 第93-96页 |
3.5 不同镉暴露时间下超富集生态型东南景天根系分泌物的代谢组学研究 | 第96-114页 |
3.5.1 植物生长与镉积累 | 第96-99页 |
3.5.2 根系分泌物的GC/MS分析 | 第99-105页 |
3.5.3 数据质量评价 | 第105-106页 |
3.5.4 模式识别分析 | 第106-108页 |
3.5.5 潜在生物标志物的识别 | 第108-111页 |
3.5.6 潜在生物标志物的生物学意义 | 第111-114页 |
3.6 讨论 | 第114-118页 |
3.7 小结 | 第118-119页 |
第4章 铅胁迫下东南景天根系分泌物的代谢组学研究 | 第119-177页 |
4.1 实验仪器与材料 | 第119-120页 |
4.1.1 仪器 | 第119-120页 |
4.1.2 试剂 | 第120页 |
4.1.3 植物材料 | 第120页 |
4.2 实验方法 | 第120-123页 |
4.2.1 植物培养 | 第120-121页 |
4.2.2 植物根系分泌物的收集 | 第121页 |
4.2.3 植物体内铅含量的测定 | 第121-122页 |
4.2.4 植物根系分泌物的预处理 | 第122页 |
4.2.5 植物根系分泌物的测定 | 第122页 |
4.2.6 数据处理 | 第122-123页 |
4.3 铅胁迫下两种生态型东南景天根系分泌物的代谢组学研究 | 第123-139页 |
4.3.1 植物生长与铅积累 | 第123-126页 |
4.3.2 根系分泌物的GC/MS分析 | 第126-131页 |
4.3.3 数据质量评价 | 第131-132页 |
4.3.4 模式识别分析 | 第132-134页 |
4.3.5 潜在生物标志物的识别 | 第134-137页 |
4.3.6 潜在生物标志物的生物学意义 | 第137-139页 |
4.4 不同铅暴露浓度下富集生态型东南景天根系分泌物的代谢组学研究 | 第139-155页 |
4.4.1 植物生长与铅积累 | 第139-141页 |
4.4.2 根系分泌物的GC/MS分析 | 第141-146页 |
4.4.3 数据质量评价 | 第146-147页 |
4.4.4 模式识别分析 | 第147-149页 |
4.4.5 潜在生物标志物的识别 | 第149-152页 |
4.4.6 潜在生物标志物的生物学意义 | 第152-155页 |
4.5 不同铅暴露时间下富集生态型东南景天根系分泌物的代谢组学研究 | 第155-172页 |
4.5.1 植物生长与铅积累 | 第155-157页 |
4.5.2 根系分泌物的GC/MS分析 | 第157-162页 |
4.5.3 数据质量评价 | 第162-163页 |
4.5.4 模式识别分析 | 第163-165页 |
4.5.5 潜在生物标志物的识别 | 第165-168页 |
4.5.6 潜在生物标志物的生物学意义 | 第168-172页 |
4.6 讨论 | 第172-174页 |
4.7 小结 | 第174-177页 |
第5章 结论与建议 | 第177-179页 |
5.1 研究结论 | 第177-178页 |
5.2 建议与展望 | 第178-179页 |
参考文献 | 第179-197页 |
致谢 | 第197-199页 |
攻读学位期间的主要成果 | 第199-201页 |
作者简介 | 第201页 |