| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-21页 |
| 1.1 地下鼠 | 第11页 |
| 1.2 甘肃鼢鼠 | 第11-13页 |
| 1.2.1 甘肃鼢鼠概述 | 第11-12页 |
| 1.2.2 甘肃鼢鼠低氧适应研究进展 | 第12-13页 |
| 1.3 血液凝固相关因子研究 | 第13-17页 |
| 1.3.1 血液凝固概述 | 第13页 |
| 1.3.2 纤维蛋白原 | 第13-14页 |
| 1.3.3 组织因子途径抑制物 | 第14-15页 |
| 1.3.4 激肽原 | 第15页 |
| 1.3.5 凝血酶原 | 第15-16页 |
| 1.3.6 其他凝血因子 | 第16-17页 |
| 1.4 转录组测序技术 | 第17-19页 |
| 1.4.1 转录组概述 | 第17页 |
| 1.4.2 RNA-Seq的优势 | 第17-18页 |
| 1.4.3 RNA-Seq的挑战 | 第18页 |
| 1.4.4 转录组的研究方法及流程 | 第18-19页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第19-21页 |
| 第2章 甘肃鼢鼠心脏转录组测序 | 第21-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第21页 |
| 2.1.2 仪器设备 | 第21-22页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-25页 |
| 2.2.1 心脏中总RNA提取 | 第22-23页 |
| 2.2.2 总RNA质量鉴定 | 第23页 |
| 2.2.3 cDNA文库的建立 | 第23页 |
| 2.2.4 转录组测序质控比对与拼接 | 第23-24页 |
| 2.2.5 Unigene功能注释及表达量分析 | 第24页 |
| 2.2.6 差异表达基因筛选 | 第24页 |
| 2.2.7 差异表达基因功能注释和富集分析 | 第24-25页 |
| 2.3 结果与分析 | 第25-34页 |
| 2.3.1 总RNA提取结果 | 第25页 |
| 2.3.2 转录组测序与拼接组装分析 | 第25-26页 |
| 2.3.3 Unigene功能注释 | 第26-27页 |
| 2.3.4 差异表达基因结果分析 | 第27页 |
| 2.3.5 差异表达基因功能注释和富集分析 | 第27-28页 |
| 2.3.6 差异表达基因的GO功能注释结果分析 | 第28-30页 |
| 2.3.7 差异表达基因KEGG代谢通路分析 | 第30-34页 |
| 2.4 讨论 | 第34-37页 |
| 第3章 纤维蛋白原基因mRNA的表达及PCR实验验证 | 第37-53页 |
| 3.1 实验材料 | 第37-38页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第37页 |
| 3.1.2 仪器设备 | 第37-38页 |
| 3.2 实验方法 | 第38-41页 |
| 3.2.1 cDNA合成 | 第38页 |
| 3.2.2 引物设计 | 第38-39页 |
| 3.2.3 PCR扩增 | 第39页 |
| 3.2.4 实时定量 | 第39-40页 |
| 3.2.5 纤维蛋白原基因片段扩增 | 第40-41页 |
| 3.3 结果与分析 | 第41-51页 |
| 3.3.1 实时定量PCR凝胶电泳扩增结果 | 第41页 |
| 3.3.2 纤维蛋白原mRNA表达结果 | 第41-44页 |
| 3.3.3 纤维蛋白原基因cDNA片段扩增结果 | 第44-51页 |
| 3.4 讨论 | 第51-53页 |
| 第4章 纤维蛋白原通路相关基因mRNA的表达 | 第53-59页 |
| 4.1 材料与方法 | 第53-54页 |
| 4.2 结果与分析 | 第54-57页 |
| 4.2.1 TFPI mRNA表达 | 第54页 |
| 4.2.2 KNG mRNA表达 | 第54-55页 |
| 4.2.3 FⅢ、FⅤ、FⅩ和FⅡ mRNA表达 | 第55-57页 |
| 4.3 讨论 | 第57-59页 |
| 第5章 总结及展望 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-73页 |
| 致谢 | 第73页 |