| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 第一章 绪论 | 第10-25页 |
| 1.1 引言 | 第10-11页 |
| 1.2 三链DNA | 第11-14页 |
| 1.2.1 三链DNA简介 | 第11页 |
| 1.2.2 三链DNA的基本结构 | 第11-12页 |
| 1.2.3 三链DNA与小分子相互作用的研究进展 | 第12-14页 |
| 1.3 分子信标 | 第14-17页 |
| 1.3.1 分子信标简介 | 第14-15页 |
| 1.3.2 分子信标的研究进展 | 第15-17页 |
| 1.4 核酸类手性传感器 | 第17-21页 |
| 1.4.1 手性传感器简介 | 第17-18页 |
| 1.4.2 核酸类手性传感器的研究进展 | 第18-21页 |
| 1.5 异喹啉生物碱 | 第21-24页 |
| 1.5.1 生物碱简介 | 第21-22页 |
| 1.5.2 异喹啉生物碱的结构对其性质的影响 | 第22-24页 |
| 1.6 本课题的主要研究内容、选题依据以及创新点 | 第24-25页 |
| 第二章 实验试剂及表征方法 | 第25-31页 |
| 2.1 实验所用到的核酸序列 | 第25-27页 |
| 2.2 实验所用的试剂 | 第27-29页 |
| 2.3 实验所用的仪器设备 | 第29页 |
| 2.4 实验表征方法 | 第29-31页 |
| 2.4.1 紫外可见吸收光谱 | 第29-30页 |
| 2.4.2 荧光稳态光谱 | 第30页 |
| 2.4.3 荧光动力学 | 第30页 |
| 2.4.4 DNA熔解实验 | 第30页 |
| 2.4.5 等温滴定量热法 | 第30-31页 |
| 第三章 以异喹啉生物碱作为选择剂、稳定剂、诱导剂以及开关信号的三链DNA荧光传感 | 第31-50页 |
| 3.1 引言 | 第31-33页 |
| 3.2 实验部分 | 第33-35页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第33-34页 |
| 3.2.2 荧光光谱测定 | 第34-35页 |
| 3.2.3 DNA熔解温度(Tm)的测定 | 第35页 |
| 3.3 结果及讨论 | 第35-48页 |
| 3.3.1 CHE是检测三链DNA最有效的开关信号 | 第35-40页 |
| 3.3.2 CHE与三链DNA结合的模型分析 | 第40-44页 |
| 3.3.3 pH和金属离子调控的三链纳米开关 | 第44-48页 |
| 3.4 结论 | 第48-50页 |
| 第四章 可调的免标记三链分子信标用于DNA分析 | 第50-61页 |
| 4.1 引言 | 第50-51页 |
| 4.2 实验部分 | 第51-52页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第51-52页 |
| 4.2.2 荧光光谱测定 | 第52页 |
| 4.2.3 DNA熔解温度(Tm)的测定 | 第52页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第52-60页 |
| 4.3.1 tMB用于DNA分析的可行性 | 第52-55页 |
| 4.3.2 tMB对DNA分析的灵敏度可调及其设计原理 | 第55-58页 |
| 4.3.3 tMB的普适性研究 | 第58-60页 |
| 4.4 结论 | 第60-61页 |
| 第五章 基于双链DNA的手性荧光传感器 | 第61-78页 |
| 5.1 引言 | 第61-62页 |
| 5.2 实验部分 | 第62-64页 |
| 5.2.1 材料和试剂 | 第62-63页 |
| 5.2.2 荧光光谱测定 | 第63页 |
| 5.2.3 DNA熔解温度(Tm)的测量 | 第63页 |
| 5.2.4 ITC测定 | 第63-64页 |
| 5.2.5 量子化学计算 | 第64页 |
| 5.3 结果及讨论 | 第64-77页 |
| 5.3.1 THP对映体与AP位点特异性结合的差异 | 第64-68页 |
| 5.3.2 以ATMND为荧光探针区分THP对映体 | 第68-72页 |
| 5.3.3 THP立体结构和AP位点数目对区分的影响 | 第72-77页 |
| 5.4 结论 | 第77-78页 |
| 第六章 结论与展望 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-95页 |
| 致谢 | 第95-96页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第96-98页 |
