| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 英文缩写索引 | 第11-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-25页 |
| 1.1 硫化氢 | 第12-13页 |
| 1.1.1 硫化氢概述 | 第12页 |
| 1.1.2 硫化氢的生理调节功能 | 第12-13页 |
| 1.2 丙烯腈 | 第13-15页 |
| 1.2.1 丙烯腈概述 | 第13-14页 |
| 1.2.2 丙烯腈毒性及其解毒剂 | 第14-15页 |
| 1.3 硫化氢与丙烯腈 | 第15-16页 |
| 1.3.1 硫化氢的神经保护性 | 第15页 |
| 1.3.2 丙烯腈与内源性H_2S代谢 | 第15-16页 |
| 1.4 硫化氢与自噬 | 第16-21页 |
| 1.4.1 硫化氢与自噬概述 | 第16页 |
| 1.4.2 硫化氢与神经系统自噬 | 第16-17页 |
| 1.4.3 硫化氢与心血管系统自噬 | 第17-19页 |
| 1.4.4 硫化氢与消化系统自噬 | 第19-20页 |
| 1.4.5 硫化氢与癌细胞自噬 | 第20页 |
| 1.4.6 硫化氢与其他组织自噬 | 第20-21页 |
| 1.5 硫化氢与Nrf2/ARE信号通路 | 第21-22页 |
| 1.6 研究内容 | 第22-25页 |
| 第二章 外源性硫化氢对丙烯腈诱导的原代星形胶质细胞毒性的影响 | 第25-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-27页 |
| 2.1.1 实验细胞 | 第25页 |
| 2.1.2 实验仪器及设备 | 第25-26页 |
| 2.1.3 实验药品及试剂 | 第26页 |
| 2.1.4 实验室常用试剂配制 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-31页 |
| 2.2.1 原代SD大鼠星形胶质细胞培养 | 第27页 |
| 2.2.2 MTT法检测细胞活力 | 第27-28页 |
| 2.2.3 LDH法检测细胞毒性 | 第28-29页 |
| 2.2.4 细胞GSH检测 | 第29-30页 |
| 2.2.5 细胞ROS检测 | 第30-31页 |
| 2.2.6 数据统计分析 | 第31页 |
| 2.3 实验结果 | 第31-36页 |
| 2.3.1 外源性硫化氢对丙烯腈诱导的星形胶质细胞活力和毒性的影响 | 第31-33页 |
| 2.3.2 外源性硫化氢对丙烯腈诱导的星形胶质细胞形态学的影响 | 第33-34页 |
| 2.3.3 外源性硫化氢对丙烯腈诱导的星形胶质细胞GSH的影响 | 第34-35页 |
| 2.3.4 外源性硫化氢对丙烯腈诱导的星形胶质细胞ROS的影响 | 第35-36页 |
| 2.4 讨论 | 第36-37页 |
| 2.5 小结 | 第37-39页 |
| 第三章 自噬在外源性H_2S拮抗AN诱导的细胞毒性中的作用研究 | 第39-57页 |
| 3.1 实验材料 | 第39-40页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第39-40页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第40页 |
| 3.2 实验方法 | 第40-47页 |
| 3.2.1 细胞全蛋白抽提 | 第40-41页 |
| 3.2.2 蛋白浓度测定 | 第41页 |
| 3.2.3 蛋白质免疫印迹法 | 第41-44页 |
| 3.2.4 免疫荧光检测细胞自噬 | 第44-45页 |
| 3.2.5 吖啶橙染色检测细胞自噬 | 第45页 |
| 3.2.6 自噬抑制剂调节细胞自噬 | 第45-46页 |
| 3.2.7 siRNA基因干扰细胞自噬 | 第46-47页 |
| 3.2.8 自噬双标腺病毒检测细胞自噬流 | 第47页 |
| 3.2.9 数据统计分析 | 第47页 |
| 3.3 实验结果 | 第47-54页 |
| 3.3.1 外源性H_2S对星形胶质细胞自噬相关蛋白表达的影响 | 第47-48页 |
| 3.3.2 免疫荧光观察LC3B的表达和分布 | 第48-49页 |
| 3.3.3 吖啶橙染色检测外源性H_2S对细胞自噬的影响 | 第49页 |
| 3.3.4 蛋白免疫印迹法检测外源性H_2S对星形胶质细胞自噬流的影响 | 第49-50页 |
| 3.3.5 自噬LC3双标腺病毒检测外源性H_2S对细胞自噬流的影响 | 第50-51页 |
| 3.3.6 药理学抑制自噬后，外源性H_2S对AN损伤的细胞活力的影响 | 第51-53页 |
| 3.3.7 基因学干扰自噬后，外源性H_2S对AN损伤的细胞活力的影响 | 第53-54页 |
| 3.4 讨论 | 第54-56页 |
| 3.5 小结 | 第56-57页 |
| 第四章 Nrf2信号在外源性H_2S拮抗AN诱导的细胞毒性中的作用研究 | 第57-65页 |
| 4.1 实验材料 | 第57页 |
| 4.1.1 实验试剂 | 第57页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第57页 |
| 4.2 实验方法 | 第57-59页 |
| 4.2.1 细胞核蛋白与细胞浆蛋白抽提 | 第57-58页 |
| 4.2.2 免疫荧光检测Nrf2核转位 | 第58页 |
| 4.2.3 siRNA基因干扰细胞Nrf2表达 | 第58-59页 |
| 4.2.4 数据统计分析 | 第59页 |
| 4.3 实验结果 | 第59-63页 |
| 4.3.1 外源性H_2S诱导星形胶质细胞Nrf2发生核转位 | 第59-60页 |
| 4.3.2 外源性H_2S对星形胶质细胞Nrf2下游蛋白表达的影响 | 第60-61页 |
| 4.3.3 基因学干扰Nrf2后，外源性H_2S对AN损伤的细胞活力的影响 | 第61-63页 |
| 4.4 讨论 | 第63-64页 |
| 4.5 小结 | 第64-65页 |
| 第五章 总结与展望 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文及参加的学术会议 | 第76-77页 |
| 1. 发表和完成的学术论文 | 第76页 |
| 2. 参加的学术会议 | 第76-77页 |
