摘要 | 第3-9页 |
ABSTRACT | 第9-17页 |
前言 | 第21-25页 |
第一章 MPTP诱导的帕金森病小鼠模型及其评价方法的确立 | 第25-39页 |
1.1 实验材料 | 第25-28页 |
1.1.1 实验动物 | 第25页 |
1.1.2 实验试剂 | 第25-26页 |
1.1.3 主要溶液配制 | 第26-27页 |
1.1.4 主要仪器设备 | 第27-28页 |
1.2 实验方法 | 第28-32页 |
1.2.1 PD动物模型的建立及动物分组 | 第28页 |
1.2.2 实验设计 | 第28页 |
1.2.3 小鼠行为学观察 | 第28页 |
1.2.4 小鼠滚筒仪实验 | 第28-29页 |
1.2.5 小鼠灌注固定取脑及新鲜中脑纹状体取材 | 第29-31页 |
1.2.6 免疫组织化学法检测TH阳性细胞的表达 | 第31-32页 |
1.2.7 统计学方法 | 第32页 |
1.3 结果 | 第32-35页 |
1.3.1 C57BL/6J小鼠PD模型的总体行为学评价 | 第32-33页 |
1.3.2 小鼠滚筒仪实验结果 | 第33-34页 |
1.3.3 小鼠中脑TH阳性多巴胺神经元含量及免疫组化检测结果 | 第34-35页 |
1.4 讨论 | 第35-38页 |
1.5 结论 | 第38-39页 |
第二章 PD小鼠模型TH、TLR4、CD11b和炎症介质的表达及TLR4抗体对其表达的影响 | 第39-79页 |
1.1 实验材料 | 第39-43页 |
1.1.1 实验动物 | 第39页 |
1.1.2 实验试剂 | 第39-40页 |
1.1.3 主要溶液配制 | 第40-42页 |
1.1.4 主要仪器设备 | 第42-43页 |
1.2 实验方法 | 第43-51页 |
1.2.1 PD动物模型的建立及动物分组 | 第43页 |
1.2.2 实验设计 | 第43-44页 |
1.2.3 小鼠鼻饲和侧脑室注射荧光标记TLR4抗体及活体成像系统的鉴定 | 第44-45页 |
1.2.4 小鼠行为学观察及测试 | 第45页 |
1.2.5 小鼠脑组织及中脑纹状体部位取材 | 第45-46页 |
1.2.6 免疫组织化学法检测 | 第46-47页 |
1.2.7 qPCR法检测小鼠纹状体内TLR4mRNA、TNFαmRNA、IL-1βmRNA的表达 | 第47-51页 |
1.2.8 统计学方法 | 第51页 |
1.3 实验结果 | 第51-60页 |
1.3.1 小鼠鼻饲或侧脑室注射TLR4抗体后小动物活体成像结果 | 第51-52页 |
1.3.2 小鼠行为学观察及滚筒仪实验结果 | 第52-53页 |
1.3.3 小鼠中脑TH阳性多巴胺神经元含量及免疫组化检测结果 | 第53-55页 |
1.3.4 小鼠中脑CD284(TLR4)细胞数量检测结果 | 第55-56页 |
1.3.5 小鼠中脑CD11b阳性小胶质细胞含量的检测结果 | 第56-57页 |
1.3.6 小鼠中脑TLR4mRNA的检测结果 | 第57-58页 |
1.3.7 小鼠中脑TNFαmRNA的检测结果 | 第58-59页 |
1.3.8 小鼠中脑IL1βmRNA的检测结果 | 第59-60页 |
1.4 讨论 | 第60-78页 |
1.4.1 TLR4在神经系统中的分布 | 第60-62页 |
1.4.2 TLR4在神经变性疾病中的作用 | 第62-63页 |
1.4.3 TLR4与帕金森病(PD) | 第63-64页 |
1.4.4 TLR4单克隆抗体给药方式及部位的选择 | 第64-69页 |
1.4.5 亚急性PD小鼠行为学表现及跌落潜伏期的变化 | 第69页 |
1.4.6 各组小鼠中脑TH阳性多巴胺神经元含量的变化 | 第69-70页 |
1.4.7 各组小鼠中脑CD284(TLR4)阳性细胞数量的变化 | 第70-71页 |
1.4.8 各组小鼠中脑CD11b阳性小胶质细胞含量的变化 | 第71-72页 |
1.4.9 各组小鼠中脑TLR4mRNA的表达变化 | 第72-73页 |
1.4.10 各组小鼠中脑TNFαmRNA和IL-1βmRNA等炎症因子表达的变化 | 第73-78页 |
1.5 结论 | 第78-79页 |
参考文献 | 第79-99页 |
发表论文原文 | 第99-110页 |
综述 | 第110-143页 |
参考文献 | 第126-143页 |
缩略词表 | 第143-145页 |
攻读学位期间成果 | 第145-146页 |
致谢 | 第146-148页 |
统计学合格证明 | 第148页 |