| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 缩写词表 | 第9-10页 |
| 第1章 前言 | 第10-12页 |
| 第2章 材料和方法 | 第12-20页 |
| 2.1 材料 | 第12-13页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第12页 |
| 2.1.2 实验细胞 | 第12页 |
| 2.1.3 主要仪器和设备 | 第12页 |
| 2.1.4 主要试剂及试剂盒 | 第12-13页 |
| 2.2 方法 | 第13-15页 |
| 2.2.1 lewis肺癌(LLC)细胞的培养 | 第13-14页 |
| 2.2.2. lewis肺癌裸鼠模型的构建 | 第14-15页 |
| 2.3 分组与给药 | 第15页 |
| 2.4 标本采集 | 第15页 |
| 2.5 HE染色 | 第15-16页 |
| 2.6 SP法免疫组化 | 第16页 |
| 2.7 荧光定量RT-PCR法 检测肿瘤组织VEGFmRNA的表达 | 第16-19页 |
| 2.7.1 Trizol 法提取肿瘤组织总 RNA，具体步骤如下 | 第17页 |
| 2.7.2 RNA 质量的测定 | 第17页 |
| 2.7.3 逆转录（合成 c DNA） | 第17-18页 |
| 2.7.4 PCR 检测 | 第18页 |
| 2.7.5 以之前逆转录所得的 c DNA 为模板进行 PCR 扩增 | 第18-19页 |
| 2.7.6 PCR 结果分析 | 第19页 |
| 2.8 统计学处理分析 | 第19-20页 |
| 第3章 结果 | 第20-25页 |
| 3.1 裸鼠肺癌模型建立情况 | 第20页 |
| 3.2 各组肿瘤瘤重和瘤重抑瘤率的比较 | 第20页 |
| 3.3 HE染色肿瘤组织病理学变化 | 第20-22页 |
| 3.4 免疫组化检测 VEGF 和 VEGFR 阳性表达 | 第22-23页 |
| 3.5 RT-PCR检测VEGFmRNA和VEGFmRNA的表达 | 第23-25页 |
| 第4章 讨论 | 第25-30页 |
| 第5章 结论与展望 | 第30-31页 |
| 5.1 结论 | 第30页 |
| 5.2 展望 | 第30-31页 |
| 致谢 | 第31-32页 |
| 参考文献 | 第32-35页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第35-36页 |
| 综述 | 第36-40页 |
| 参考文献 | 第38-40页 |
