| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略符号表 | 第12-13页 |
| 1 引言 | 第13-21页 |
| 1.1 多糖类物质的研究进展 | 第13-14页 |
| 1.1.1 多糖的提取 | 第13页 |
| 1.1.2 多糖的纯化和分离技术 | 第13-14页 |
| 1.1.3 多糖的纯度鉴定 | 第14页 |
| 1.1.4 多糖的生物活性 | 第14页 |
| 1.2 抗肿瘤活性多糖的研究进展 | 第14-17页 |
| 1.2.1 抗肿瘤活性多糖的种类 | 第14-15页 |
| 1.2.2 活性多糖抗肿瘤机制研究 | 第15-16页 |
| 1.2.3 活性多糖抗肿瘤作用的影响因素 | 第16-17页 |
| 1.3 海洋抗肿瘤活性多糖研究进展 | 第17-18页 |
| 1.3.1 海洋植物多糖的抗肿瘤活性 | 第17页 |
| 1.3.2 海洋动物多糖的抗肿瘤活性 | 第17-18页 |
| 1.3.3 海洋微生物多糖的抗肿瘤活性 | 第18页 |
| 1.4 扇贝多糖生理活性研究进展 | 第18-19页 |
| 1.5 本课题的研究目的及主要研究内容 | 第19-21页 |
| 2 海湾扇贝多糖提取技术研究 | 第21-31页 |
| 2.1 试验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 试验原料及试剂 | 第21页 |
| 2.1.2 主要仪器及设备 | 第21-22页 |
| 2.2 试验方法 | 第22-23页 |
| 2.2.1 海湾扇贝粗多糖的提取 | 第22页 |
| 2.2.2 多糖含量的测定 | 第22页 |
| 2.2.3 多糖提取率的计算 | 第22-23页 |
| 2.2.4 单因素试验 | 第23页 |
| 2.2.5 响应曲面法优化试验 | 第23页 |
| 2.3 结果与分析 | 第23-29页 |
| 2.3.1 标准工作曲线 | 第23-24页 |
| 2.3.2 单因素试验结果 | 第24-25页 |
| 2.3.3 响应曲面法优化试验结果 | 第25-28页 |
| 2.3.4 响应曲面法优化试验结果的验证 | 第28-29页 |
| 2.4 本章小结 | 第29-31页 |
| 3 海湾扇贝多糖的纯化及分离技术研究 | 第31-43页 |
| 3.1 试验材料 | 第31-32页 |
| 3.1.1 试验原料及试剂 | 第31页 |
| 3.1.2 主要仪器及设备 | 第31-32页 |
| 3.2 试验方法 | 第32-35页 |
| 3.2.1 海湾扇贝粗多糖的制备 | 第32页 |
| 3.2.2 多糖含量测定 | 第32页 |
| 3.2.3 蛋白质含量测定 | 第32-33页 |
| 3.2.4 蛋白质脱除率及多糖损失率的计算 | 第33页 |
| 3.2.5 海湾扇贝多糖蛋白质脱除方法的选择 | 第33页 |
| 3.2.6 海湾扇贝多糖的分离纯化 | 第33-34页 |
| 3.2.7 海湾扇贝多糖纯度鉴定 | 第34-35页 |
| 3.3 结果与分析 | 第35-40页 |
| 3.3.1 蛋白质测定标准工作曲线 | 第35页 |
| 3.3.2 乙醇沉淀法对蛋白质脱除率及多糖损失率的影响 | 第35页 |
| 3.3.3 TCA 用量对蛋白质脱除率及多糖损失率的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.4 TCA 作用时间对蛋白质脱除率及多糖损失率的影响 | 第36-37页 |
| 3.3.5 乙醇沉淀＋TCA 法对蛋白质脱除率及多糖损失率的影响 | 第37页 |
| 3.3.6 DEAE-52 纤维素离子交换层析分离海湾扇贝多糖 | 第37-38页 |
| 3.3.7 葡聚糖凝胶层析法分离海湾扇贝多糖 | 第38-39页 |
| 3.3.8 海湾扇贝多糖酸性组分纯度鉴定 | 第39-40页 |
| 3.4 本章小结 | 第40-43页 |
| 4 海湾扇贝多糖体外抗肿瘤活性研究 | 第43-59页 |
| 4.1 试验材料 | 第43-44页 |
| 4.1.1 试验原料及试剂 | 第43页 |
| 4.1.2 主要仪器及设备 | 第43-44页 |
| 4.2 试验方法 | 第44-47页 |
| 4.2.1 海湾扇贝多糖酸性组分的制备 | 第44页 |
| 4.2.2 肿瘤细胞培养 | 第44-45页 |
| 4.2.3 海湾扇贝多糖对体外培养的肿瘤细胞的增殖抑制作用 | 第45页 |
| 4.2.4 海湾扇贝多糖对体外培养的肿瘤细胞形态的影响 | 第45-46页 |
| 4.2.5 海湾扇贝多糖对体外培养的肿瘤细胞显微结构的影响 | 第46页 |
| 4.2.6 海湾扇贝多糖对体外培养的肿瘤细胞超微结构的影响 | 第46-47页 |
| 4.2.7 海湾扇贝多糖对体外培养的肿瘤细胞生长周期的影响 | 第47页 |
| 4.3 结果与分析 | 第47-57页 |
| 4.3.1 海湾扇贝多糖对体外培养的 B16F10 细胞的影响 | 第47-50页 |
| 4.3.2 海湾扇贝多糖对体外培养的 SKOV3 细胞的影响 | 第50-54页 |
| 4.3.3 海湾扇贝多糖对体外培养的 HepG2 细胞的影响 | 第54-57页 |
| 4.4 本章小结 | 第57-59页 |
| 5 海湾扇贝多糖体内抗肿瘤活性及对免疫系统的影响 | 第59-69页 |
| 5.1 试验材料 | 第59-60页 |
| 5.1.1 试验原料及试剂 | 第59-60页 |
| 5.1.2 主要仪器及设备 | 第60页 |
| 5.2 试验方法 | 第60-63页 |
| 5.2.1 主要试剂的配制 | 第60-61页 |
| 5.2.2 海湾扇贝多糖体内抑瘤作用观察 | 第61页 |
| 5.2.3 海湾扇贝多糖免疫增强活性检测 | 第61-63页 |
| 5.2.4 统计学处理 | 第63页 |
| 5.3 结果与分析 | 第63-67页 |
| 5.3.1 海湾扇贝多糖对 H22腹水瘤小鼠体重的影响 | 第63-64页 |
| 5.3.2 海湾扇贝多糖对 H22腹水瘤小鼠存活期的影响 | 第64页 |
| 5.3.3 海湾扇贝多糖对健康小鼠脏器指数的影响 | 第64-65页 |
| 5.3.4 海湾扇贝多糖对健康小鼠腹腔巨噬细胞吞噬能力的影响 | 第65-66页 |
| 5.3.5 海湾扇贝多糖对健康小鼠脾脏 T-淋巴细胞增殖能力的影响 | 第66-67页 |
| 5.4 本章小结 | 第67-69页 |
| 6 扇贝多糖抗氧化活性研究 | 第69-79页 |
| 6.1 试验材料 | 第69-70页 |
| 6.1.1 试验原料及试剂 | 第69-70页 |
| 6.1.2 主要仪器及设备 | 第70页 |
| 6.2 试验方法 | 第70-72页 |
| 6.2.1 羟自由基清除率测定 | 第70页 |
| 6.2.2 DPPH·清除能力测定 | 第70-71页 |
| 6.2.3 超氧阴离子自由基清除能力测定 | 第71页 |
| 6.2.4 还原能力测定 | 第71页 |
| 6.2.5 海湾扇贝多糖体内抗氧化活性测定 | 第71-72页 |
| 6.2.6 统计学处理 | 第72页 |
| 6.3 结果与分析 | 第72-78页 |
| 6.3.1 海湾扇贝多糖对·OH 的清除作用 | 第72-73页 |
| 6.3.2 海湾扇贝多糖对 DPPH·的清除作用 | 第73-74页 |
| 6.3.3 海湾扇贝多糖对 O_2·的清除作用 | 第74页 |
| 6.3.4 海湾扇贝多糖的还原能力 | 第74-75页 |
| 6.3.5 海湾扇贝多糖对小鼠肝、肾组织中 SOD 活力的影响 | 第75-76页 |
| 6.3.6 海湾扇贝多糖对小鼠肝、肾组织中 GSH-Px 活力的影响 | 第76-77页 |
| 6.3.7 海湾扇贝多糖对小鼠实验动物肝、肾组织中 CAT 活力的影响 | 第77页 |
| 6.3.8 海湾扇贝多糖对小鼠实验动物肝、肾组织中 MDA 含量的影响 | 第77-78页 |
| 6.4 本章小结 | 第78-79页 |
| 7 结论 | 第79-81页 |
| 7.1 主要结论 | 第79页 |
| 7.2 创新点 | 第79-81页 |
| 参考文献 | 第81-91页 |
| 就读期间发表的学术论文 | 第91-93页 |
| 作者简历 | 第93-95页 |
| 致谢 | 第95-96页 |
