| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 符号说明 | 第10-13页 |
| 前言 | 第13-19页 |
| 研究现状、成果 | 第13-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-19页 |
| 一、检测TDs对骨骼肌细胞膜表面GLUT4myc水平的影响 | 第19-32页 |
| 1.1 材料 | 第19-22页 |
| 1.1.1 细胞系 | 第19页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第19-20页 |
| 1.1.3 主要溶液及缓冲液 | 第20-22页 |
| 1.1.4 主要仪器及设备 | 第22页 |
| 1.2 方法 | 第22-24页 |
| 1.2.1 培养和分化C2C12-GLUT4myc细胞 | 第22-23页 |
| 1.2.2 培养和分化L6-GLUT4myc细胞 | 第23页 |
| 1.2.3 类ELISA法检测TDs对C2C12-GLUT4myc细胞GLUT4转位的影响 | 第23页 |
| 1.2.4 类ELISA法检测TD-3对L6-GLUT4myc细胞GLUT4转位的影响 | 第23-24页 |
| 1.2.5 MTS法检测TD-3对骨骼肌细胞活性的影响 | 第24页 |
| 1.3 结果 | 第24-30页 |
| 1.3.1 培养和分化C2C12-GLUT4myc细胞 | 第24-25页 |
| 1.3.2 培养和分化L6-GLUT4myc细胞 | 第25页 |
| 1.3.3 TDs对C2C12-GLUT4myc细胞GLUT4转位的影响 | 第25-27页 |
| 1.3.4 TD-3对L6-GLUT4myc细胞GLUT4转位的影响 | 第27-29页 |
| 1.3.5 TD-3对骨骼肌细胞活性的影响 | 第29-30页 |
| 1.4 小结 | 第30-32页 |
| 二、探讨委陵菜黄酮衍生物TD-3刺激骨骼肌细胞GLUT4myc转位的机制 | 第32-46页 |
| 2.1 材料 | 第32-36页 |
| 2.1.1 细胞系与主要试剂 | 第32-33页 |
| 2.1.2 主要溶液及缓冲液 | 第33-35页 |
| 2.1.3 主要仪器及设备 | 第35-36页 |
| 2.2 方法 | 第36-38页 |
| 2.2.1 培养和分化C2C12-GLUT4myc细胞 | 第36页 |
| 2.2.2 培养和分化L6-GLUT4myc细胞 | 第36页 |
| 2.2.3 免疫印迹法检测TD-3对C2C12-GLUT4myc细胞内AMPK,ACC及Akt磷酸化水平的影响 | 第36-37页 |
| 2.2.4 免疫印迹法检测TD-3对L6-GLUT4myc细胞内AMPK,ACC及Akt磷酸化水平的影响 | 第37页 |
| 2.2.5 检测TD-3和胰岛素共同作用于C2C12-GLUT4myc细胞对GLUT4转位的影响 | 第37页 |
| 2.2.6 检测Compound C对TD-3刺激的C2C12-GLUT4myc细胞GLUT4转位的影响 | 第37-38页 |
| 2.3 结果 | 第38-44页 |
| 2.3.1 TD-3对骨骼肌细胞内GLUT4,GLUT1及AMPK α蛋白表达的影响 | 第38页 |
| 2.3.2 TD-3对C2C12-GLUT4myc细胞内GLUT4转位相关信号蛋白磷酸化水平的影响 | 第38-40页 |
| 2.3.3 TD-3对L6-GLUT4myc细胞内GLUT4转位相关信号蛋白磷酸化水平的影响 | 第40-42页 |
| 2.3.4 TD-3和胰岛素共同作用于骨骼肌细胞对GLUT4转位的影响 | 第42-43页 |
| 2.3.5 CC对TD-3刺激的骨骼肌细胞GLUT4myc转位的影响 | 第43-44页 |
| 2.4 小结 | 第44-46页 |
| 讨论 | 第46-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-56页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第56-57页 |
| 综述 | 第57-71页 |
| 综述参考文献 | 第64-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
