| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 研究现状、成果 | 第15-17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-18页 |
| 材料和方法 | 第18-38页 |
| 1.1 实验动物选择和饲养 | 第18页 |
| 1.1.1 实验动物选择 | 第18页 |
| 1.1.2 实验动物饲养 | 第18页 |
| 1.2 主要试剂和仪器 | 第18-20页 |
| 1.2.1 主要试剂 | 第18-19页 |
| 1.2.2 主要仪器 | 第19-20页 |
| 1.3 实验方法 | 第20-37页 |
| 1.3.1 实验动物饲料 | 第20页 |
| 1.3.2 建立糖尿病大鼠模型、分组、取材及检测相关生化指标 | 第20-23页 |
| 1.3.3 ELISA技术检测大鼠血清NF-κB p65、TGF-β1、COL-Ⅳ、FN、LN水平 | 第23-24页 |
| 1.3.4 q-PCR技术检测大鼠肾组织NF-κB-p65、TGF-β1、COL-Ⅳ、FN、LN mRNA的表达 | 第24-29页 |
| 1.3.5 Western印迹技术检测大鼠肾组织NF-κB p65、TGF-β1、COL-Ⅳ、FN、LN蛋白的表达 | 第29-35页 |
| 1.3.6 免疫组化技术检测实验动物肾组织NF-κB p65、TGF-β1、COL-IV、FN、LN的表达 | 第35-37页 |
| 1.4 统计学方法 | 第37-38页 |
| 结果 | 第38-56页 |
| 2.1 动物模型 | 第38-56页 |
| 2.1.1 实验动物一般情况 | 第38页 |
| 2.1.2 大鼠成模前血糖、血脂和胰岛素分泌情况 | 第38-39页 |
| 2.1.3 各组大鼠成模率情况 | 第39页 |
| 2.1.4 各组大鼠体重、血糖、KW/BW、血脂、肝功能、肾功能、外周血、UMA相关指标变化 | 第39-47页 |
| 2.1.5 各组大鼠肾小球形态学观察 | 第47-48页 |
| 2.1.6 ELISA法检测大鼠血清NF-κd3 p65、TGF-β1、COL-Ⅳ、FN、LN水平 | 第48-49页 |
| 2.1.7 q-PCR技术扩增检测各目的基因mRNA水平 | 第49-52页 |
| 2.1.8 Western印迹法检测预防组大鼠肾组织NF-κB p65、TGF-β1、COL-Ⅳ、FN、LN蛋白的表达 | 第52-54页 |
| 2.1.9 免疫组化法检测大鼠肾脏各目的基因的表达 | 第54-56页 |
| 讨论 | 第56-62页 |
| 3.1 TGF-β1对肾小球系膜细胞细胞外基质(ECM)表达及机制的研究 | 第57-58页 |
| 3.2 TGFβ1与NF-κB炎症信号通路之间的相互作用 | 第58-59页 |
| 3.3 COL-Ⅳ、LN、FN对肾小球系膜细胞ECM表达及机制的研究 | 第59-60页 |
| 3.4 雷公藤多苷对TGF-β1及NF-κB信号通路的影响 | 第60-61页 |
| 3.5 总结与展望 | 第61-62页 |
| 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-68页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第68-69页 |
| 综述 有关糖尿病肾病相关炎症信号通路的研究进展 | 第69-78页 |
| 综述参考文献 | 第75-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 个人简历 | 第79页 |
