摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
1 前言 | 第12-23页 |
1.1 鱼类遗传多样性的含义、研究方法和意义 | 第12-16页 |
1.1.1 遗传多样性的含义 | 第12页 |
1.1.2 鱼类遗传多样性的研究方法 | 第12-15页 |
1.1.3 鱼类遗传多样性的研究意义 | 第15-16页 |
1.2 ISSR分子标记技术 | 第16-18页 |
1.2.1 ISSR标记原理 | 第16页 |
1.2.2 ISSR标记特点 | 第16-17页 |
1.2.3 ISSR标记在鱼类遗传多样性研究中的应用 | 第17-18页 |
1.3 乌鳢、鳜鱼和斑鳜研究综述 | 第18-21页 |
1.3.1 生物学特征 | 第18-20页 |
1.3.2 经济价值 | 第20页 |
1.3.3 乌鳢、鳜鱼和斑鳜遗传多样性研究现状 | 第20-21页 |
1.4 本研究的目的和意义 | 第21-23页 |
2 材料与方法 | 第23-32页 |
2.1 实验材料 | 第23-25页 |
2.1.1 实验样品 | 第23页 |
2.1.2 实验仪器 | 第23-24页 |
2.1.3 实验试剂 | 第24-25页 |
2.2 实验方法 | 第25-29页 |
2.2.1 实验所需溶液的制备 | 第25-26页 |
2.2.2 基因组DNA的提取及检测 | 第26-27页 |
2.2.3 ISSR引物筛选 | 第27页 |
2.2.4 ISSR-PCR反应体系的优化 | 第27-29页 |
2.2.5 ISSR-PCR扩增条件优化 | 第29页 |
2.2.6 ISSR-PCR扩增结果的检测 | 第29页 |
2.3 数据统计与分析 | 第29-30页 |
2.4 遗传多样性参数 | 第30-32页 |
3 结果 | 第32-43页 |
3.1 模板DNA质量的检测及定量 | 第32页 |
3.2 引物的筛选 | 第32-33页 |
3.3 ISSR-PCR优化结果 | 第33-35页 |
3.3.1 正交设计试验结果 | 第33页 |
3.3.2 ISSR-PCR反应体系再优化结果 | 第33-34页 |
3.3.3 退火温度优化结果 | 第34页 |
3.3.4 循环次数优化结果 | 第34-35页 |
3.4 ISSR-PCR扩增结果 | 第35-37页 |
3.5 乌鳢居群的遗传多样性和遗传结构 | 第37-39页 |
3.5.1 遗传多样性 | 第37-38页 |
3.5.2 遗传分化系数Gst和基因流 | 第38页 |
3.5.3 基于Shannon’s信息指数分析遗传分化 | 第38-39页 |
3.6 鳜鱼居群的遗传多样性和遗传结构 | 第39-40页 |
3.6.1 遗传多样性 | 第39页 |
3.6.2 遗传分化系数Gst和基因流 | 第39页 |
3.6.3 基于Shannon’s信息指数分析遗传分化 | 第39-40页 |
3.7 斑鳜居群的遗传多样性和遗传结构 | 第40-43页 |
3.7.1 遗传多样性 | 第40-41页 |
3.7.2 遗传分化系数Gst和基因流 | 第41页 |
3.7.3 基于Shannon’s信息指数分析遗传分化 | 第41-43页 |
4 讨论 | 第43-49页 |
4.1 实验样品的保存和基因组DNA的提取 | 第43-44页 |
4.2 乌鳢、鳜鱼和斑鳜ISSR-PCR反应体系优化 | 第44-45页 |
4.3 乌鳢居群的遗传多样性和遗传结构分析 | 第45-46页 |
4.4 鳜鱼居群的遗传多样性和遗传结构分析 | 第46-47页 |
4.5 斑鳜居群的遗传多样性和遗传结构分析 | 第47-49页 |
5 结语 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-58页 |
附录A:3 种群和居群内个体间的遗传距离 | 第58-64页 |
致谢 | 第64-65页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第65-66页 |