| 中文摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6页 |
| 绪论 | 第10-14页 |
| 实验一 脂肪干细胞的分离、培养及鉴定 | 第14-29页 |
| 1 引言 | 第14-15页 |
| 2 实验器材和试剂材料 | 第15-17页 |
| 2.1 主要实验试剂及配置方法 | 第15-16页 |
| 2.2 主要仪器与设备 | 第16-17页 |
| 2.3 脂肪来源 | 第17页 |
| 3 实验方法 | 第17-22页 |
| 3.1 ASCs体外分离培养 | 第17-18页 |
| 3.2 人ASCs的生长曲线 | 第18-19页 |
| 3.3 人脂肪干细胞的成骨及成脂诱导分化 | 第19-22页 |
| 3.4 人脂肪干细胞流式细胞仪分析 | 第22页 |
| 4 实验结果 | 第22-26页 |
| 4.1 人脂肪干细胞形态学观察 | 第22-23页 |
| 4.2 人脂肪干细胞的生长曲线 | 第23-24页 |
| 4.3 人脂肪干细胞成骨和成脂诱导分化 | 第24-26页 |
| 4.4 人脂肪干细胞流式分析 | 第26页 |
| 5 讨论 | 第26-29页 |
| 实验二 periostin在低氧环境下对ASCs的影响的实验研究 | 第29-44页 |
| 1 引言 | 第29-30页 |
| 2 实验器材和试剂材料 | 第30-32页 |
| 2.1 主要实验试剂及配制方法 | 第30-31页 |
| 2.2 主要仪器与设备 | 第31-32页 |
| 2.3 脂肪来源 | 第32页 |
| 3 实验方法 | 第32-36页 |
| 3.1 低氧条件下periostin对ASC细胞形态的影响 | 第32页 |
| 3.2 低氧条件下，Periostin对ASC细胞诱导成血管能力的检测 | 第32-33页 |
| 3.3 periostin对ASC基因表达的影响 | 第33-36页 |
| 3.4 流式细胞检测 | 第36页 |
| 4 实验结果 | 第36-41页 |
| 4.1 低氧条件下，periostin对ASC形态的影响 | 第36-37页 |
| 4.2 低氧条件下，periostin对ASC诱导成血管 | 第37-41页 |
| 5 讨论 | 第41-44页 |
| 实验三 Periostin复合自体脂肪颗粒体内移植实验 | 第44-62页 |
| 1 引言 | 第44-45页 |
| 2 实验器材和试剂材料 | 第45-48页 |
| 2.1 主要实验试剂及配制方法 | 第45-46页 |
| 2.2 实验仪器与实验材料 | 第46-48页 |
| 2.3 脂肪来源 | 第48页 |
| 3 实验方法 | 第48-53页 |
| 3.1 脂肪颗粒的获取 | 第48页 |
| 3.2 移植脂肪复合物的制备 | 第48-49页 |
| 3.3 脂肪体内移植实验 | 第49页 |
| 3.4 脂肪移植的成活率 | 第49页 |
| 3.5 移植脂肪组织大体及组织学观察 | 第49-53页 |
| 3.6 数据分析 | 第53页 |
| 4 实验结果 | 第53-59页 |
| 5.1 移植脂肪的大体形态 | 第53-54页 |
| 5.2 移植脂肪组织的组织学分析 | 第54-59页 |
| 5 讨论 | 第59-62页 |
| 全文总结 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 攻读硕士学位期间已发表或录用的论文及学术奖项 | 第68页 |
