| 摘要 | 第10-12页 |
| ABSTRACT | 第12-13页 |
| 主要缩略词 | 第14-15页 |
| 第一部分 循环内皮细胞在急性心肌梗塞疾病中检测方法的设计及其临床有效性验证 | 第15-50页 |
| 前言 | 第15-20页 |
| 第一章 多参数共同标记CEC体系的设计与体系变异性检测 | 第20-37页 |
| 1.1 材料和方法 | 第20-30页 |
| 1.1.1 主要试剂和仪器 | 第20-22页 |
| 1.1.2 细胞培养 | 第22页 |
| 1.1.3 VEGF小鼠模型构建 | 第22页 |
| 1.1.4 人体外周血样本 | 第22-23页 |
| 1.1.5 外周血样本采集 | 第23页 |
| 1.1.6 流式细胞术检测血液样本 | 第23-26页 |
| 1.1.7 Real-time PCR检测CECs水平 | 第26-29页 |
| 1.1.8 实验变异性检测 | 第29页 |
| 1.1.9 统计学分析 | 第29-30页 |
| 1.2 结果 | 第30-35页 |
| 1.2.1 组内检测本实验数据的稳定性 | 第30-32页 |
| 1.2.2 Real-time PCR检测KDR基因表达对比流式细胞术检测CECs的含量 | 第32-33页 |
| 1.2.3 时间对CECs检测含量变化的影响 | 第33-35页 |
| 1.3 讨论 | 第35-37页 |
| 第二章 多参数共同标记CEC体系在临床中的应用 | 第37-45页 |
| 2.1 材料和方法 | 第37-41页 |
| 2.1.1 主要试剂和仪器 | 第37-38页 |
| 2.1.2 人体外周血样本 | 第38-39页 |
| 2.1.3 外周血样本采集 | 第39页 |
| 2.1.4 流式细胞术检测血液样本 | 第39-41页 |
| 2.1.5 统计学分析 | 第41页 |
| 2.2 结果 | 第41-44页 |
| 2.2.1 检验CECs在临床AMI病患中水平表达 | 第41-43页 |
| 2.2.2 检验CECs在临床AMI病患预后中水平表达 | 第43-44页 |
| 2.3 讨论 | 第44-45页 |
| 总结 | 第45-46页 |
| 参考文献（列出全部作者） | 第46-50页 |
| 第二部分 叶酸受体靶标的近红外荧光探针的合成及其细胞成像性验证 | 第50-71页 |
| 前言 | 第50-55页 |
| 3.1 设计思路 | 第55-56页 |
| 3.2 仪器与试剂 | 第56-57页 |
| 3.3 目标化合物及中间体的合成 | 第57-60页 |
| 3.3.1 化合物3的合成 | 第57页 |
| 3.3.2 化合物5的合成 | 第57-58页 |
| 3.3.3 化合物6的合成 | 第58页 |
| 3.3.4 化合物7的合成 | 第58页 |
| 3.3.5 荧光染料的合成 | 第58页 |
| 3.3.6 目标产物FA-EDBEA-CS2的合成 | 第58-59页 |
| 3.3.7 目标产物的光学性质检测 | 第59页 |
| 3.3.8 细胞培养与成像 | 第59-60页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第60-66页 |
| 3.4.1 荧光染料的合成 | 第60-61页 |
| 3.4.2 化合物3的合成 | 第61-62页 |
| 3.4.3 化合物 5、6、7 的合成 | 第62页 |
| 3.4.4 目标产物FA-EDBEA-CS2的合成 | 第62-63页 |
| 3.4.5 FA-EDBEA-CS2光谱性能的研究 | 第63-65页 |
| 3.4.6 FA-EDBEA-CS2的生物成像 | 第65-66页 |
| 3.5 讨论 | 第66-68页 |
| 参考文献（列出全部作者） | 第68-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 附录一 共同第一作者，已接受发表的文章 | 第72-80页 |
| 附录二 化学反应所合成的中间产物、目标产物的核磁（NMR），质谱（LMS）谱图 | 第80-83页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第83页 |
