| 摘要 | 第4-6页 |
| 英文摘要 | 第6-7页 |
| 缩略词中英文对照表 | 第10-11页 |
| 第一章 间充质干细胞临床应用的研究进展 | 第11-18页 |
| 1.1 MSCs的生物学特征 | 第11-14页 |
| 1.1.1 MSCs的多向分化潜能 | 第12页 |
| 1.1.2 MSCs的免疫调节能力 | 第12-13页 |
| 1.1.3 MSCs的表面标志及鉴定 | 第13页 |
| 1.1.4 MSCs的其他生物学特性 | 第13-14页 |
| 1.2 MSCs的临床应用 | 第14-17页 |
| 1.2.1 细胞移植治疗 | 第14-16页 |
| 1.2.2 基因治疗 | 第16页 |
| 1.2.3 MSCs在组织工程中的应用 | 第16-17页 |
| 1.3 问题及展望 | 第17-18页 |
| 第二章 人脐带间充质干细胞对肝癌细胞抑制作用的优化 | 第18-41页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-20页 |
| 2.1.1 材料 | 第19页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.3 主要实验仪器 | 第20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-27页 |
| 2.2.1 培养液配制 | 第20-21页 |
| 2.2.2 人脐带MSCs的培养 | 第21-22页 |
| 2.2.3 肝癌细胞HepG2的培养 | 第22-23页 |
| 2.2.4 建立CoCl_2低氧模型 | 第23页 |
| 2.2.5 条件培养基的提取 | 第23-24页 |
| 2.2.6 不同浓度的条件培养基的配制 | 第24-25页 |
| 2.2.7 增殖试剂盒检测HepG2的细胞增殖 | 第25-27页 |
| 2.3 实验结果 | 第27-39页 |
| 2.3.1 人脐带MSCs与肝癌细胞HepG2培养结果 | 第27页 |
| 2.3.2 人脐带MSCs上清液抑制HepG2增殖 | 第27-28页 |
| 2.3.3 TNF-α预处理的人脐带MSCs上清液对HepG2增殖无影响 | 第28-31页 |
| 2.3.4 低氧处理的人脐带MSCs上清液对HepG2增殖抑制无促进作用 | 第31-33页 |
| 2.3.5 抗肿瘤药物与人脐带MSCs协同作用抑制HepG2增殖 | 第33-39页 |
| 2.4 讨论 | 第39-41页 |
| 2.4.1 TNF-α预处理的人脐带MSCs上清液对HepG2增殖无影响 | 第39页 |
| 2.4.2 低氧处理的人脐带MSCs上清液对HepG2的抑制无促进作用 | 第39-40页 |
| 2.4.3 抗肿瘤药物与人脐带MSCs协同作用抑制HepG2增殖 | 第40-41页 |
| 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-49页 |
| 致谢 | 第49页 |
