| 摘要 | 第13-16页 |
| Abstract | 第16-20页 |
| 缩略词 | 第27-29页 |
| 第一章 绪论 | 第29-50页 |
| 1.1 甲醛污染状况和危害 | 第29页 |
| 1.2 甲醛污染治理方法 | 第29-36页 |
| 1.2.1 物理吸附 | 第29-30页 |
| 1.2.2 化学方法 | 第30页 |
| 1.2.3 生物净化法 | 第30-36页 |
| 1.3 植物甲醛代谢机理 | 第36-43页 |
| 1.3.1 甲醛在植物体内的代谢机制 | 第36-38页 |
| 1.3.2 液体甲醛胁迫下甲醛在植物体内的代谢机制 | 第38-43页 |
| 1.4 提高植物甲醛代谢能力的基因工程操作 | 第43-45页 |
| 1.5 乙醛酸生理功能和意义 | 第45-47页 |
| 1.6 乙醛酸途径的转录调控机制及在植物应答逆境胁迫中的作用 | 第47-49页 |
| 1.7 研究目的和意义 | 第49-50页 |
| 第二章 两种黑大豆根系吸收甲醛模式和代谢机理分析 | 第50-77页 |
| 2.1 材料与方法 | 第51-53页 |
| 2.1.1 植物材料培养 | 第51页 |
| 2.1.2 甲醛胁迫处理 | 第51页 |
| 2.1.3 甲醛吸收测定 | 第51-52页 |
| 2.1.4 氧化指标测定 | 第52-53页 |
| 2.1.5 H~(13)CHO标记实验及~(13)C-NMR分析 | 第53页 |
| 2.1.6 实验数据的统计学分析 | 第53页 |
| 2.2 结果与分析 | 第53-71页 |
| 2.2.1 黑大豆甲醛吸收 | 第53-56页 |
| 2.2.2 甲醛处理对黑大豆产生的胁迫影响 | 第56-58页 |
| 2.2.3 低浓度H~(13)CHO在两种黑大豆根中的代谢分析 | 第58-65页 |
| 2.2.4 高浓度H~(13)CHO在两种黑大豆根中的代谢分析 | 第65-71页 |
| 2.2.5 两种黑大豆叶片中H~(13)CHO代谢分析 | 第71页 |
| 2.3 讨论 | 第71-77页 |
| 2.3.1 两种黑大豆植株甲醛吸收的异同点 | 第71-72页 |
| 2.3.2 低浓度H~(13)CHO处理下黑大豆根部代谢比较 | 第72-74页 |
| 2.3.3 高浓度甲醛处理下黑大豆根部代谢比较 | 第74-77页 |
| 第三章 两种黑大豆根系甲醛代谢途径的亚细胞定位分析 | 第77-98页 |
| 3.1 材料与方法 | 第78-79页 |
| 3.1.1 植物材料培养与处理 | 第78页 |
| 3.1.2 甲醛含量测定 | 第78页 |
| 3.1.3 ~(13)C-甲醛标记实验及~(13)C-NMR分析 | 第78页 |
| 3.1.4 实验数据统计分析 | 第78-79页 |
| 3.2 结果与分析 | 第79-95页 |
| 3.2.1 251μM CSA预处理对两种黑大豆甲醛吸收的影响 | 第79-83页 |
| 3.2.2 两种黑大豆经25μM CSA预处理后根中甲醛(4h)代谢分析 | 第83-89页 |
| 3.2.3 两种黑大豆经25μM CSA预处理后根中甲醛(24h)代谢分析 | 第89-95页 |
| 3.2.4 CSA预处理的植物中叶片核磁代谢分析 | 第95页 |
| 3.3 讨论 | 第95-98页 |
| 第四章 各甲醛代谢途径产物及抗氧化剂在黑大豆根系甲醛吸收中的作用分析 | 第98-109页 |
| 4.1 材料与方法 | 第99页 |
| 4.1.1 植物材料培养 | 第99页 |
| 4.1.2 植物材料处理 | 第99页 |
| 4.1.3 甲醛含量测定 | 第99页 |
| 4.1.4 实验数据的统计学分析 | 第99页 |
| 4.2 结果与分析 | 第99-107页 |
| 4.2.1 不同浓度柠檬酸(Cit)预处理对SB甲醛吸收的影响 | 第99-100页 |
| 4.2.2 不同浓度乙醛酸(GX)预处理对SB甲醛吸收的影响 | 第100-101页 |
| 4.2.3 不同浓度甘氨酸(Gly)预处理对SB甲醛吸收的影响 | 第101页 |
| 4.2.4 不同浓度丝氨酸(Ser)预处理对SB甲醛吸收的影响 | 第101-102页 |
| 4.2.5 不同浓度苹果酸(Malate)预处理对SB甲醛吸收的影响 | 第102页 |
| 4.2.6 不同浓度草酸(OA)预处理对SB甲醛吸收的影响 | 第102-103页 |
| 4.2.7 糖类物质预处理对SB甲醛吸收的影响 | 第103-105页 |
| 4.2.8 不同浓度抗坏血酸(ASA)预处理对SB甲醛吸收的影响 | 第105页 |
| 4.2.9 不同浓度还原型谷胱甘肽(GSH)预处理对SB甲醛吸收的影响 | 第105-106页 |
| 4.2.10 外源物质对SB甲醛吸收的影响汇总 | 第106-107页 |
| 4.3 讨论 | 第107-109页 |
| 第五章 外源性甲醇对黑大豆根系甲醛吸收和代谢的影响 | 第109-128页 |
| 5.1 材料与方法 | 第110-111页 |
| 5.1.1 植物材料培养 | 第110页 |
| 5.1.2 植物材料处理 | 第110页 |
| 5.1.3 ~(13)CH_3OH或H~(13)CHO标记实验及~(13)C-NMR分析 | 第110-111页 |
| 5.1.4 实验数据统计分析 | 第111页 |
| 5.2 结果与分析 | 第111-126页 |
| 5.2.1 外源性甲醇利用对SB植株根生长情况,根重及株高的影响 | 第111页 |
| 5.2.2 水培SB植株经不同浓度~(13)CH_3OH处理不同时间后根中代谢分析 | 第111-115页 |
| 5.2.3 水培SB植株经不同浓度~(13)CH_3OH处理2h后根中代谢分析 | 第115-118页 |
| 5.2.4 水培SB植株经不同浓度~(13)CH_3OH处理24h后根中代谢分析 | 第118-120页 |
| 5.2.5 单因素实验研究SB植株对甲醛最大吸收量的条件 | 第120-125页 |
| 5.2.6 甲醇预处理对SB根部H~(13)CHO代谢的影响 | 第125-126页 |
| 5.3 讨论 | 第126-128页 |
| 第六章 甲醇刺激下SB植株根系对甲醛吸收的条件优化及数学模型的建立 | 第128-138页 |
| 6.1 材料与方法 | 第129-131页 |
| 6.1.1 植物材料培养与处理 | 第129页 |
| 6.1.2 甲醛含量测定 | 第129页 |
| 6.1.3 Central Composite Design设计及响应面模型分析 | 第129-131页 |
| 6.1.4 模型验证 | 第131页 |
| 6.2 结果与分析 | 第131-136页 |
| 6.2.1 相应面二项式模型的方差分析及模型有效性验证 | 第131-134页 |
| 6.2.2 响应面分析和模型验证 | 第134-136页 |
| 6.3 讨论 | 第136-138页 |
| 第七章 基于DNA芯片分析甲醇刺激SB植株吸收甲醛的转录机制 | 第138-167页 |
| 7.1 材料与方法 | 第139-143页 |
| 7.1.1 植物材料培养 | 第139页 |
| 7.1.2 植物材料处理 | 第139页 |
| 7.1.3 总RNA提取和RT-PCR分析 | 第139页 |
| 7.1.4 ~(13)C-甲醇标记实验及~(13)C-NMR分析 | 第139页 |
| 7.1.5 基因芯片杂交与数据分析 | 第139-140页 |
| 7.1.6 RT-PCR分析 | 第140-143页 |
| 7.2 结果 | 第143-164页 |
| 7.2.1 SB叶片甲醇响应基因的鉴定 | 第143-144页 |
| 7.2.2 甲醇刺激的上调表达基因 | 第144-148页 |
| 7.2.3 甲醇刺激的下调表达基因 | 第148-151页 |
| 7.2.4 甲醇应答基因的表达谱分析 | 第151-154页 |
| 7.2.5 不同浓度~(13)CH_3OH处理水培SB植株,不同时间叶片中的代谢分析 | 第154-156页 |
| 7.2.6 不同浓度~(13)CH_3OH处理水培SB植株2h叶片中的代谢分析 | 第156-158页 |
| 7.2.7 不同浓度~(13)CH_3OH涂抹盆栽SB植株叶面,不同时间叶片的代谢分析 | 第158-159页 |
| 7.2.8 不同浓度~(13)CH_3OH涂抹盆栽SB植株叶片2h的代谢分析 | 第159-164页 |
| 7.3 讨论 | 第164-167页 |
| 7.3.1 甲醇诱导上调表达的转录和信号转导相关基因 | 第164页 |
| 7.3.2 甲醇刺激的胁迫和防御基因表达 | 第164-165页 |
| 7.3.3 甲醇刺激的细胞结构/生长和植物发育 | 第165页 |
| 7.3.4 能量代谢以及蛋白合成降解,转运 | 第165页 |
| 7.3.5 甲醇在根中与叶片中代谢比较 | 第165-167页 |
| 第八章 总结与展望 | 第167-171页 |
| 致谢 | 第171-172页 |
| 参考文献 | 第172-193页 |
| 攻读博士期间科研成果 | 第193页 |
